🙌尾静脉注射是药效评价、细胞移植、基因递送中最常用的给药途径之一，也是许多刚进实验室的同学最先卡住的一关。\n🤷‍♀️它难的其实不是"扎"这一个动作，而是在一条直径不足 1 毫米的尾静脉，连续做出三个判断：这条是不是静脉、针有没有真的进去、要不要重来。\n\n本期：把操作流程拆成 7 步，配上示意图，供参考~\n\n 一｜先把东西凑齐\n1ml注射器、酒精棉球、要打的样品、固定器（有静脉可视固定器更省事）\n⚠️药液过 0.22μm 滤膜，别带气泡。细胞悬液要吹打均匀，原因在最后。\n\n二｜固定\n固定器保定，只露尾巴。\n笼盖压尾慎用❌ 得有人帮你按住笼子，不然小鼠一动，这针白扎。\n\n三｜让血管"现形"（挑一个）\n① 40-45℃ 温水泡尾巴\n② 加热灯照 10 分钟\n③ 可视固定器打光，或涂点酒精／肝素钠\n④ 关灯，手电从下往上打（我最常用）\n\n四｜认血管：三静一动（重点）\n背侧那条：最粗，首选✅\n两侧那两条：细，新手别碰❌\n腹侧那条：这是动脉！颜色偏红、有搏动，绝对不能扎！！！\n\n五｜进针\n尾巴拉直，2/3 处用拇指食指捏住，拇指顶在下面当个"托"。\n别捏太狠，血管一白，这针也基本没了。\n针头斜面朝上，跟静脉平行，滑到斜面完全进去。\n轻推活塞——对了会看到"一闪而过的回血"；没有就保持负压，微调角度再看。\n看到回血再往里 2-4mm，然后慢慢匀速推药。\n✅ 推着没阻力，能看到药液在血管里走\n❌ 有阻力、扎的地方发白、鼓包\n→ 立刻拔针，在原进针点的【上方】重扎。别在下面扎，液体会从原来的针眼漏出来。\n一侧不行就换对侧。\n\n六｜拔针 & 收尾\n直着拔，拇指压住穿刺点，压到不出血为止。\n针头直接丢锐器盒。一只鼠一根新针，省不得。\n\n☠️ 最后这条最重要\n细胞悬液里只要有细胞团，就会跟着血流进右心→肺动脉→肺毛细血管（管径只有 5-10μm）→卡住即成机械性栓塞，急性肺循环障碍，直接没了。\n· PBS 洗 2 次，1mL 枪轻柔吹打 20 次（别猛吸）\n· 40μm 细胞筛过一遍\n· 上针前 500rpm 离心 5 分钟，去掉大团\n单次注射量一般 ≤200μL，超了也容易栓塞。\n\nMCE 可提供 400+ 疾病诱导模型产品、siRNA 三保一套装、3000+ 抑制剂、630+ 试剂盒、3000+ 荧光染料及 16,000+ 抗体，覆盖从模型构建到机制验证的常见需求。\n\n👉 需要产品资料、试用装申请或技术咨询，欢迎扫描文末二维码联系~ \n\n#尾静脉注射 #动物实验 #实验室日常 #科研日常 #小鼠实验 #实验技巧