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端粒酶活性检测试剂盒

提供者:上海松茸生物科技有限公司   发布时间:2023/7/7 14:20:15  阅读次数:70次  进入该公司店铺

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胡*
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【产品规格】

BPT50 50T(50人份 ,其中5个组分按5个10人份单独包装,Biowing® Specific Reverse Transcription Primer按20µL*2单独包装。)

【产品说明】

端粒酶 (Telomerase ) 是一种酶促核糖蛋白复合物。其催化亚基 (TERT) 具有逆转录酶的特

性,TERT被认为是端粒酶活性表达的关键组分,其编码的mRNA水平与端粒酶活性一致,与端粒酶的活化程度密切相关。因此,对端粒酶催化亚基的检测可以间接反映样本中端粒酶活性。

本产品试剂盒采用双色荧光qPCR(TaqMan探针法) 检测端粒酶催化亚基TERT基因和内参基因***DH 。通过提取细胞RNA ,利用特异性逆转录引物进行逆转录反应, 以cDNA为模板在单管中利用多重荧光定量PCR进行扩增反应 (双重探针:FAM 、Cy5) 。选用293T细胞为阳性对照以及MRC-5细胞为阴性对照,判断样本中是否有TERT基因表达。该试剂盒具有以下特点:

1. 灵敏:双色探针,灵敏度高。

2. 稳定:全程闭管操作,无交叉污染。

3. 可靠:含内参基因,避免假阴性。

4. 方便:操作简单,无需电泳步骤。

5. 定量: 以CT值判断,可定量检测。

【运输及保存条件】

低温冷冻运输 ,避光-20℃保存 ,有效期6个

月。开盖后,4℃保存,有效期1周。

【产品组分】

组分名称

BPT50

Biowing® Specific Reverse Transcription Primer

20µL*2

Biowing®qPCR Mix

312µL*5

Biowing®Probe qPCR Primer

90µL*5

Positive Control

10µL*5

Negative Control

10µL*5

RNase Free Water

200µL*5

注:1.本试剂盒提供试剂,使用先低速离心、后小心开启。使用时请上下轻柔颠倒十次混匀,避免起泡,并低速短暂离心后使用;2.为了避免反复冻融,10人份/管作为一个包装。

【操作步骤】

1. 逆转录反应

使用Trizol法抽提细胞RNA ,RNA纯度A260/280在1.9-2.0之间。取1ug RNA使用Thermo逆转录试剂盒(货号:K1622 ),将试剂盒中的 Random Primer 替换成Biowing® Specific Reverse TranscriptionPrimer进行反转录反应得到cDNA。

1. 1 DNase I处理

RNA (µg)

DNase Buffer(µL)

DNase Ⅰ( µL)

DEPC 水(µL)

1

1

1

To 10

反应程序:37℃ 30min ;加 EDTA 1 µL 后,65℃,10min

1.2 逆转录反应

RNA( µL)

Biowing® Specific Reverse Transcription Primer( µL)

5×Buffer ( µL)

RT( µL)

RI( µL)

dNTP(µL)

5.5

0.5

2

0.5

0.5

1

反应程序:20℃ 10min ;42℃ 1h;72℃ 5min

2. qPCR反应体系及条件

2. 1 阳性对照处理

将阳性对照cDNA进行4倍、8倍的梯度稀释,每个梯度建议三重复。

2.2 阴性对照处理

将阴性对照cDNA进行4倍、8倍的梯度稀释,每个梯度建议三重复。

2.3 样本处理

将待测样本cDNA进行4倍稀释作为测试浓度,每个样本做三重复。

反应体系 (以20µL为例)

组分/样品管

待测样品(µL)

阳性对照管(µL)

阴性对照管(µL)

Biowing®qPCR Mix

10.4

10.4

10.4

Biowing®Probe qPCR Primer

3

3

3

Sample

3

0

0

Positive Control

0

3

0

Negative Control

0

0

3

RNase Free Water

3.6

3.6

3.6

PCR仪设置 (以ABI 7500为例)

步骤

循环数

温度

时间

1

预变性

1

94℃

5 min

2

变性

40

95℃

15 s

退火

58℃

45 s

延伸

72℃

1 min

温度选择:72℃延伸时收集荧光信号

通道选择:样本检测通道-FAM; 内参检测通道-Cy5

【基线设置】(以ABI 7500为例)

一般默认起始和终止基线位置为3- 15个循环,应根据内参基因和TERT基因实际扩增曲线手动将基线起始循环数调整为指数增之即可。

【阈值设置】(以ABI 7500为例)

内参阈值设定: 以阳性对照4倍稀释cDNA定内参基因扩增曲线阈值, 内参基因(Cy5)初始浓度的CT值定 为17±3;

TERT阈值设定: 以阳性对照4倍稀释cDNA定TERT基因扩增曲线阈值,TERT基因(FAM)初始浓度CT值的定为25±3。

【结果判读】

图1左: 阳性对照的扩增曲线;右: 阴性对照的扩增曲线

(蓝色为TERT基因曲线,黄绿色为内参基因曲线)

1. 阳性对照4倍稀释后TERT基因Ct值在25±3,内参基因Ct值在17±3,8倍稀释后TERT基因Ct值在26±3,内参基因Ct值在18±3。TERT基因和内参基因之间∆CT维持在9±3,保持稳定。

2. 阴性对照经4倍、8倍梯度稀释后,TERT基因Ct值≥35 (或检测不到) ,内参基因Ct值仍在18±3之间,判定为端粒酶活性为阴性。

3. 结果说明

若待测样本内参基因Ct值在17±3之间,TERT基因Ct值<35且扩增曲线正常,则样本端粒酶活性为阳性。

若待测样本内参基因Ct值在17±3之间,TERT基因Ct值≥35且无明显的扩增曲线,则样本无端粒酶活性。

【说明】

1. 待测样本cDNA 4倍稀释作为模板,三次技术重复,不设置梯度稀释;阳性对照、阴性对照进行4倍、8倍梯度稀释,建议分别做三重复;避免偶然误差的产生。

2. 如果阳性/阴性对照4倍稀释后内参基因Ct值>20,表明参考品有降解或者试剂盒扩增效率下降。

3. 如果所有样本4倍稀释后内参基因Ct值>20,表明试剂盒的扩增效率下降。

4. 如果阳性对照4倍稀释后TERT基因Ct值>28 ,表明TERT基因检测系统失效。

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