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大鼠IgA定量EIA试剂盒

提供者:上海信裕生物科技有限公司   发布时间:2012/10/20 13:49:24  阅读次数:606次  进入该公司店铺

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大鼠IgA定量EIA试剂盒使用说明

原理

本实验采用双抗体夹心 ELISA法。用抗大鼠IgA单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的 IgA与单抗结合,加入酶标抗体,形成免疫复合物连接在板上,加入酶底物TMB,出现蓝色,加终止液硫酸,颜色变黄,在450nm处测OD值,IgA浓度与OD值成正比,可通过绘制标准曲线求出标本中IgA浓度。

试剂盒组成(2-8℃保存)

酶标板(Coated Wells)

96孔

酶标抗体工作液(Enzyme Conjugate)

12ml

10×标本稀释液(Sample Buffer)

12ml

20×浓缩洗涤液(Wash Buffer)

50ml

标准品(Standards):5ug/瓶

2瓶

底物工作液(TMB Solution)

12ml

封板纸

一张

终止液(Stop Solution)

12ml

准备试剂与收集血样

1. 收集标本:血清、血浆(EDTA、肝素抗凝)、细胞培养上清液、尿液等尽早检测,2-8℃保存48小时;更长时间须冷冻(-20 ℃或-70 ℃)保存,避免反复冻融。血清或血浆至少做1:100倍稀释。

2. 标准品液配制:使用前加入0.5ml蒸馏水混匀,配成10000ng/ml的溶液。设标准管8管,第一管加标本稀释液900ul,第二至第八管加入标本稀释液500ul。在第一管中加入10000ng/ml的标准品溶液100ul混匀后用加样器吸出500ul,移至第二管。如此反复作对倍稀释,从第七管中吸出500ul弃去。第八管为空白对照。

3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释(示例:1ml浓稀释液+9ml蒸馏水)。

4. 洗涤液:用重蒸水1:20稀释(示例:1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水)

检测程序

1. 加样:每孔各加入标准品或待测样品100ul,将反应板充分混匀后置37℃120分钟。

2. 洗板:用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次,向滤纸上印干。。

3. 每孔加酶标抗体工作液100ul。将反应板置37℃60分钟。

4. 洗板:同前。

5. 每孔加入底物工作液100ul,置37 ℃暗处反应15分钟。

6. 每孔加入100ul终止液混匀。

7. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。

结果计算与判断

1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。

2. 以标准品1000、500、250、125、62、31、15.6、0 ng/ml为横坐标,OD值为纵坐标,在坐标纸上作图,画出标准曲线。

3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应IgA含量,再乘上稀释倍数即可。

试剂盒性能

1. 灵敏度:最小的IgA 检测浓度小于8ng/ml。

2. 特异性:可同时检测重组或天然的大鼠IgA。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。

3. 重复性:板内、板见变异系数均小于10%。

注意事项

1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔,每次测定应同时做标准曲线。

2. 洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。

3. 板条开封后剩余板条要再封好,保持板条干燥。

4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。

5. 本试剂盒仅用于科研,不能用于临床诊断!
大鼠IgA定量EIA试剂盒使用说明
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