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CT-2A-GFP-Puro稳转株
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详细内容
CT-2A-GFP-Puro稳转株
英文名称 | CT-2A-GFP-Puro polyclonal stable cell line |
产品货号 | XY-M1172 |
中文名称 | GFP 标记的 CT-2A 稳转株 |
Lot number | CT-2A-10A1P |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 上皮样细胞 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转株; (4)稳转株质检(COA)。 |
完全培养基 | DMEM-H + 10% FBS |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液 |
存储条件 | 液氮 |

1. 基本概念解析
CT-2A 细胞:
CT-2A 是小鼠胶质母细胞瘤(glioblastoma)细胞系,具有恶性增殖能力,常用于神经系统肿瘤模型的构建。
GFP 标记:
GFP(绿色荧光蛋白)通过基因转染整合到细胞基因组中,使细胞表达 GFP,便于通过荧光显微镜或流式细胞术等手段进行实时追踪、定位或分选。
Puro 抗性筛选:
Puro(嘌呤霉素)是一种抗生素,稳转株通过引入携带 Puro 抗性基因的质粒,使成功整合目的基因的细胞在含 Puro 的培养基中存活,未成功转染的细胞被淘汰,从而获得稳定表达 GFP 的细胞群体。
2. 构建流程与技术要点
载体设计:
构建含 GFP 基因和 Puro 抗性基因的重组质粒(如慢病毒载体、逆转录病毒载体等),通常需在 GFP 基因前插入强启动子(如 CMV 启动子)以确保稳定表达。
转染与筛选:
通过脂质体转染、电穿孔或病毒感染等方法将载体导入 CT-2A 细胞。
转染后使用 Puro 进行压力筛选(浓度需预实验优化),存活细胞经有限稀释法或单细胞克隆获得单克隆稳转株。
鉴定验证:
荧光检测:显微镜下观察 GFP 荧光强度及分布,确认表达稳定性。
分子生物学验证:通过 PCR 检测 GFP 基因整合,Western blot 检测 GFP 蛋白表达水平。
功能验证:检测细胞增殖、凋亡、迁移等生物学行为是否受 GFP 表达影响(需与野生型 CT-2A 细胞对比)。
3. 应用场景
体内外追踪研究:
体外:观察细胞形态、增殖动力学或药物处理后的荧光变化(如凋亡时细胞膜完整性改变导致 GFP 泄漏)。
体内:将细胞接种至小鼠(如免疫缺陷鼠)构建原位肿瘤模型,通过活体成像系统监测肿瘤生长、转移及药物响应(GFP 信号强度反映肿瘤负荷)。
细胞分选与纯化:
利用流式细胞术(FACS)根据 GFP 荧光强度分选高表达细胞,用于制备单细胞悬液或富集特定亚群。
基因功能研究工具:
若 GFP 与目的基因(如致癌基因、抑癌基因)共表达,可通过荧光标记间接追踪目的基因的表达模式,或用于共定位实验(如与线粒体、细胞核标记物共染)。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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