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详细内容
STC-1-GFP-Puro稳转株
英文名称 | STC-1-GFP-Puro polyclonal stable cell line |
产品货号 | XY-M1180 |
中文名称 | GFP 标记的 STC-1 稳转株 |
Lot number | STC-1-10A1P |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 上皮细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转株; (4)稳转株质检(COA)。 |
完全培养基 | DMEM-H + 10% FBS + 1% P/S(选择添加) |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液 |
存储条件 | 液氮 |

一、核心组成与构建原理
1. 细胞背景:STC-1 细胞
来源:STC-1 细胞是小鼠小肠内分泌细胞株,通常用于研究肠道激素分泌、细胞增殖及信号转导等机制。
特性:具有分泌功能,可表达多种胃肠激素(如胃泌素、生长抑素等),适合模拟体内内分泌细胞的生理或病理状态。
2. 关键元件
GFP(绿色荧光蛋白):作为报告基因,表达后可发出绿色荧光,便于通过荧光显微镜或流式细胞术实时追踪细胞位置、形态及基因表达情况。
Puro(嘌呤霉素抗性基因):作为筛选标记,赋予细胞对嘌呤霉素的抗性,用于稳转株构建过程中筛选成功整合外源基因的细胞克隆。
3. 构建流程
载体构建:将 GFP 基因和 Puro 抗性基因插入到合适的载体(如慢病毒载体、质粒载体)中,形成重组表达载体。
细胞转染 / 感染:通过脂质体转染、电穿孔或病毒感染(如慢病毒)将重组载体导入 STC-1 细胞。
抗性筛选:使用嘌呤霉素处理细胞,未成功整合载体的细胞死亡,存活细胞即为稳定表达 GFP 的稳转株。
单克隆筛选与鉴定:通过有限稀释法或流式细胞术分选单克隆细胞,验证 GFP 表达的稳定性和均一性。
二、主要应用场景
1. 细胞成像与追踪
实时观察:利用 GFP 荧光标记,在活细胞成像中动态监测 STC-1 细胞的迁移、分化、凋亡或与其他细胞 / 分子的相互作用。
组织定位:将稳转株移植到动物模型中,通过荧光成像分析细胞在体内的分布(如肠道组织中的定植)。
2. 基因表达与功能研究
报告基因检测:GFP 的荧光强度可反映目的基因(与 GFP 共表达)的转录或翻译水平,用于分析启动子活性、信号通路调控等。
共定位分析:结合其他荧光标记(如线粒体、细胞核染料),研究目标蛋白在细胞内的定位及共定位关系。
3. 药物筛选与毒性评估
高通量筛选:利用荧光信号强度变化快速评估药物对 STC-1 细胞增殖、凋亡或激素分泌的影响,适用于药物初筛。
毒性监测:通过观察 GFP 标记细胞的形态变化或荧光强度下降,判断化合物的细胞毒性。
4. 细胞示踪与动物模型研究
肿瘤研究:若 STC-1 细胞具有肿瘤特性(如异位表达癌基因),稳转株可用于构建荧光标记的移植瘤模型,追踪肿瘤生长和转移。
免疫研究:在免疫缺陷小鼠中注射 GFP 标记的 STC-1 细胞,分析免疫细胞对靶细胞的识别和清除效率。
三、优势与局限性
优势
稳定性:外源基因整合至细胞基因组,可长期传代并稳定表达 GFP,避免瞬时转染的荧光信号丢失问题。
可视化便捷性:无需额外标记,直接通过荧光显微镜观察,适合动态或高通量实验。
筛选高效性:嘌呤霉素筛选可快速富集阳性细胞,提高稳转株构建效率。
局限性
插入突变风险:外源基因随机整合可能影响细胞内源性基因表达,需通过测序或功能验证排除干扰。
荧光干扰:GFP 的激发光可能与其他荧光探针(如 RFP、Cy3)存在光谱重叠,需合理设计实验方案。
细胞特性改变:基因操作可能影响 STC-1 细胞的原有功能(如激素分泌水平),需通过功能实验验证稳转株的生物学特性。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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