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Caco-2-Puro+ffluc2稳转株
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详细内容
Caco-2-Puro+ffluc2稳转株
英文名称 | Caco-2-Puro+ffluc polyclonal stable cell line |
产品货号 | XY-H2292 |
中文名称 | ffluc 标记的 Caco-2 稳转株 |
Lot number | Caco-2-24D3P |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 上皮细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转株; (4)稳转株质检(COA)。 |
完全培养基 | DMEM-H + 20% FBS + 1% NEAA + 1% P/S(选择添加) |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液 |
存储条件 | 液氮 |

Caco-2-Puro+ffluc2 的关键要素:
筛选标记:Puro(嘌呤霉素)
用于筛选成功转染的细胞。含 Puro 抗性基因的载体转入细胞后,未成功整合外源基因的细胞会被嘌呤霉素杀死,存活细胞即为稳定转染株。
报告基因:ffluc2(荧光素酶)
ffluc2是萤火虫荧光素酶(Firefly Luciferase)的优化版本,具有更高的酶活性和稳定性。
应用场景:
体内外成像:通过荧光素底物发光,实时监测细胞在动物模型中的分布、增殖或药物响应(如肿瘤转移研究)。
定量分析:通过检测荧光强度,量化细胞数量、基因表达水平或药物处理后的细胞活性变化。
构建流程与技术要点
1. 载体设计
构建含ffluc2 基因和Puro 抗性基因的重组质粒(如慢病毒载体、质粒载体),确保两者共表达。
载体需包含:
启动子(如 CMV 启动子,驱动 ffluc2 持续表达);
多克隆位点(便于插入其他目的基因,如需同时研究转运蛋白与荧光素酶的关联)。
2. 细胞转染
方法:常用慢病毒感染(适用于难转染细胞)或脂质体转染。
关键步骤:
病毒包装:在 293T 细胞中包装含目的基因的慢病毒颗粒;
感染 Caco-2 细胞:通过梯度稀释确定最佳感染复数(MOI),确保高效转染且细胞毒性最低。
3. 筛选与鉴定
嘌呤霉素筛选:转染后 48⁻⁷2 小时加入 Puro(浓度需预实验优化,通常为 0.5-2 µg/mL),持续培养 2-3 周,直至未转染细胞全部死亡。
单克隆化:通过有限稀释法或流式细胞分选(FACS)获得单细胞克隆,确保稳转株遗传背景均一。
鉴定方法:
荧光素酶活性检测:裂解细胞后加入荧光素底物,用酶标仪检测发光强度;
Western blot:验证 ffluc2 蛋白表达;
基因组 PCR:确认外源基因整合到细胞基因组中。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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