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TM3-GFP-Puro+ffluc单克隆株
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详细内容
TM3-GFP-Puro+ffluc单克隆株
产品名称 | TM3-ffluc2-GFP-Puro 单克隆细胞株 |
产品货号 | XY-M1253 |
中文名称 | ffluc2、GFP 双标的 TM3 单克隆细胞株 |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 上皮细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转细胞株; (4)采用无限稀释法筛选单克隆细胞株; (5)单克隆细胞株质检(COA)。 |
完全培养基 | DMEM / F12 (1 : 1) + 5% HS + 2.5% FBS |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液 |
存储条件 | 液氮 |
共享方式 | 公益性共享 |

基本概念
TM3 细胞:来源于小鼠睾丸间质细胞(Leydig cell),常用于内分泌研究、细胞信号传导等领域。
GFP(绿色荧光蛋白):作为报告基因,使细胞表达绿色荧光,便于通过荧光显微镜或流式细胞术等观察和分选细胞。
Puro(嘌呤霉素):抗生素抗性基因,用于筛选成功转染的细胞(含 Puro 抗性基因的细胞可在嘌呤霉素存在的培养基中存活)。
ffluc(萤火虫荧光素酶):另一种报告基因,通过荧光素酶反应产生生物荧光,常用于活体成像、细胞增殖或体内追踪研究。
构建与筛选流程
载体构建:
将 GFP、Puro 抗性基因和 ffluc 基因插入到合适的质粒载体中,形成重组质粒(如慢病毒载体)。
载体需包含各基因的启动子(如 CMV 启动子)以确保基因表达。
细胞转染:
使用脂质体转染、电穿孔或病毒感染(如慢病毒)等方法,将重组质粒导入 TM3 细胞。
抗性筛选:
在培养基中添加嘌呤霉素,未成功转染的细胞死亡,存活细胞为稳定表达 Puro 抗性基因的单克隆株。
单克隆化:
通过有限稀释法或流式细胞分选(FACS)筛选单细胞克隆,确保每个克隆来源于单个细胞,遗传背景均一。
鉴定与验证:
荧光检测:通过荧光显微镜观察 GFP 表达(绿色荧光),确认 GFP 整合成功。
ffluc 活性检测:加入荧光素底物,通过 luminometer 检测荧光强度,验证 ffluc 功能活性。
遗传稳定性验证:传代培养后重复检测荧光表达和抗性,确保基因稳定遗传。
应用场景
细胞示踪与成像:
体外:利用 GFP 荧光标记观察细胞形态、迁移或分化过程。
体内:将细胞移植到小鼠模型中,通过 ffluc 荧光素酶活体成像技术追踪肿瘤生长、转移或药物分布。
药物筛选与毒性研究:
通过嘌呤霉素筛选稳定转染的细胞株,结合 GFP 或 ffluc 信号强度变化,评估药物对细胞增殖、凋亡的影响。
信号通路研究:
结合 GFP 标记的亚细胞结构(如细胞膜、细胞器),研究信号分子的定位与动态变化;利用 ffluc 报告基因检测特定通路的活性(如通过启动子驱动 ffluc 表达)。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
热门标签:TM3-GFP-Puro+ffluc单克隆株,ffluc2,GFP,双标的,TM3,单克隆细胞株,,TM3,单克隆细胞株















