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上海笃玛生物科技有限公司

第12年

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  • PCR-ELISA 端粒酶检测法的优缺点有哪些?

    pcr-elisa 端粒酶检测法的优缺点有哪些?优点灵敏度高:结合了 trap 的 pcr 扩增放大效应,可检测少量细胞样本中的低水平端粒酶活性,能检出几十个肿瘤细胞的端粒酶活性,远优于直接生化检测。高通量、操作相对简便:基于酶标板检测,一次可批量检测多个样本;不需要聚丙烯酰胺凝胶电泳、放射自显影,省去制胶、跑胶、染胶等繁琐步骤,节省时间。无放射性污染:早期经典 trap 法常用同位素标记,本方法......
    发布时间:2026/10/12
  • PCR-ELISA 端粒酶检测法

    pcr-elisa 端粒酶检测法pcr‑elisa 端粒酶检测法(trap‑elisa,端粒重复扩增 - elisa)本质:trap(端粒重复扩增)+ 核酸杂交 elisa,用来检测端粒酶的酶活性(不是测蛋白含量,是测功能活性),经典商品化方法就是 roche telotaggg telomerase pcr elisa。核心逻辑:端粒酶是逆转录酶,能在生物素标记的 ts 引物 3’端不断添加tt......
    发布时间:2026/10/12
  • 间接 ELISA 检测抗体总量的操作流程中,每一步的作用是什么?

    间接 elisa 检测抗体总量的操作流程中,每一步的作用是什么?1. 包被(抗原包被酶标板)操作:将纯化抗原稀释后加入酶标孔,4℃过夜,洗板拍干。作用:把抗原固定在聚苯乙烯固相孔壁上。固相载体依靠疏水相互作用吸附蛋白抗原,为体系提供捕获靶标抗体的结合位点。洗板去除未吸附游离抗原,避免游离抗原干扰后续抗体结合。2. 封闭操作:加入封闭液(bsa / 脱脂奶)孵育,之后洗板。作用:酶标板表面还有大量未......
    发布时间:2026/10/12
  • 间接 ELISA 检测抗体总量的操作流程是怎样的?

    间接 elisa 检测抗体总量的操作流程是怎样的?适用:定量检测样本(血清、细胞上清等)中抗原特异性抗体总量;包被抗原,捕获样本抗体,hrp 标记二抗显色。试剂准备:包被缓冲液(cbs,ph9.6)、洗涤液 pbst(ph7.4,含 0.05% tween-20)、封闭液(1%~5% bsa/pbs 或脱脂奶粉)、标准抗体、待测样本、hrp 标记二抗、tmb 底物、终止液(2 m h₂so₄)1.......
    发布时间:2026/10/12
  • ELISA 检测抗体的含量

    elisa 检测抗体的含量elisa 检测抗体含量(定量 elisa,测样本中抗体浓度)原理核心:抗原包被固相载体 → 捕获样本中的目标抗体 → 酶标二抗结合抗体 → 底物显色,吸光度与样本抗体浓度在一定范围内正相关,用标准品做曲线,计算待测样本抗体含量。类型:最常用间接 elisa检测抗体总量;如果要测抗原特异性抗体,就是间接法;测抗体亲和力不适合这个定量。一、基本原理将纯化抗原固定在酶标板孔底......
    发布时间:2026/10/12
  • BCA 法测定蛋白时,如何减少边缘效应的影响?

    bca 法测定蛋白时,如何减少边缘效应的影响?边缘效应本质是孵育过程中 96 孔板最外圈孔的溶剂更容易蒸发,工作液浓缩,最终造成 od 值异常偏高或者偏低,bca 显色体系受热之后蒸发带来的偏移会更加明显。首先可以优先选用板内孔排布,尽量不使用最外圈的一圈孔,全部标准品、待测样本、复孔都安排在板子中间区域,最外围一圈全部空置不用。这是最简单直接的处理方式,但缺点是可使用的孔位变少,样本量大的时候一......
    发布时间:2026/10/10
  • BCA法测定蛋白的问题排查

    bca法测定蛋白的问题排查原理回顾,碱性环境下蛋白质可以将二价铜离子还原成一价铜离子,bca 试剂和一价铜离子结合生成紫色复合物,在 562nm 进行比色测定;该方法容易受到还原剂、螯合剂以及高浓度去污剂的干扰。标准曲线相关问题标准曲线线性差,r² 数值偏低。首先考虑 bsa 标准品反复冻融发生降解,bsa 母液建议分装冻存,避免反复冻融。配制标准梯度点的时候低体积点位容易引入移液误差,低浓度点尽......
    发布时间:2026/10/10
  • 组织从-80冰箱拿出来之后放到了-20,过了6天才放回-80,对后续提取RNA跑QPcr影响大吗?

    组织从-80冰箱拿出来之后放到了-20,过了6天才放回-80,对后续提取rna跑qpcr影响大吗?情况总结组织从‑80 拿出来放到‑20,连续 6 天,全程没有融化(维持固态冰冻),之后放回‑80。关键点:不是拿出来室温化冻,只是保存温度从‑80 升高到‑20,组织依旧是冻硬的冰块,没有变成液态。1、风险有多大✅如果全程组织始终坚硬冰冻,没有发生解冻回融:多数普通动物组织 rna 不一定会明显降解......
    发布时间:2026/10/10
  • 手工标注量杯的操作步骤是什么?

    手工标注量杯的操作步骤是什么?待标记量杯、经过校准的标准量筒、清水、油漆笔(玻璃)/ 油性记号笔(塑料)、平整水平台面。注意:手工自制刻度精度差,仅做粗略估量,不能用于精密定量实验;量杯上宽下窄,严禁按高度均分刻度,必须加水逐点标记。将待标注的量杯平稳放在水平台面上,杯身保持竖直,不要歪斜。使用标准量筒量取设定体积的清水,全部倒入待标记量杯中。静置等待液面完全稳定,眼睛平视液面,视线对齐液体凹液面......
    发布时间:2026/10/10
  • 怎么标注量杯?

    怎么标注量杯?量杯标注(刻度标记)分两种情况:成品量杯补标刻度、自制简易量杯做标记一、准备工具记号笔(耐水油性记号笔;如果玻璃量杯建议油漆笔,普通记号笔遇水容易擦掉)、标准量具(标准量筒 / 已经准的量杯)、清水、滴管、平的操作台。⚠️优先提醒:自己手工标注精度很低,只能粗略定量,不能用于精密实验,仅粗略取用;精密实验请直接采购检定合格的量具。二、手工标注操作步骤把待标记的量杯放在水平桌面,保证杯......
    发布时间:2026/10/10
  • 细胞培养过程中,双抗的最佳添加时间是什么?

    细胞培养过程中,双抗的最佳添加时间是什么?先明确前提:双抗不是必加试剂,优先提倡无抗培养;仅在容易污染的条件下临时使用,不建议长期依赖。双抗作用:抑制革兰阳性 / 阴性细菌;对真菌、支原体完全无效。最佳添加时机方式 1:配完全培养基时提前加入(最常用)在基础培养基(dmem/rpmi‑1640)加入胎牛血清之后,临使用配制完全培养基的时候再加双抗,混匀后分装储存。流程:基础培养基 + 血清 → 加......
    发布时间:2026/10/10
  • 细胞培养过程中如何避免支原体污染?

    细胞培养过程中如何避免支原体污染?细胞培养支原体污染的预防支原体没有细胞壁,普通光学显微镜看不见;抗生素(青霉素‑链霉素)对它无效;污染后细胞不一定明显死亡,只会出现增殖变慢、转染效率下降、凋亡升高、代谢异常,还会干扰后续 pcr、wb、测序等实验,优先以预防为主,不要依赖事后加药清除。一、环境与超净台层面(源头防控)超净工作台定期维护每次使用前紫外照射 30 min;台面用 75% 乙醇擦拭;风......
    发布时间:2026/10/10
  • 如何避免在细胞培养基中错误添加双抗?

    如何避免在细胞培养基中错误添加双抗?错误添加包含四类问题:加多、加少、忘记添加、不该加的时候加上双抗(代谢 / 分化实验误用含双抗培养基)。从流程、操作、标识、复核、习惯五个层面管控。一、配制环节:集中大瓶配好再分装(最重要原则)❌禁止:先分装基础培养基到各个培养瓶,再逐个瓶子补加双抗。每瓶手动移液会引入大量随机误差,有的多有的少,还容易漏加。✅正确:先在大容量母瓶完成完全培养基配制:基础培养基 ......
    发布时间:2026/10/10
  • 双抗加多了会对细胞培养产生哪些长期影响?

    双抗加多了会对细胞培养产生哪些长期影响?这里的长期影响分两种情形:①持续长期在过量双抗培养基传代;②短期暴露于过量双抗之后换回正常培养基,但损伤没有完全消除。核心毒性靶点依旧是链霉素干扰线粒体核糖体翻译,青霉素贡献很小。注意:很多长期损伤属于隐性,细胞形态可以维持正常,不容易通过普通镜检发现。1. 线粒体功能持续性缺陷(最核心的长期遗留效应)链霉素进入细胞抑制线粒体编码的呼吸链蛋白合成。如果只是短......
    发布时间:2026/10/10
  • 如何避免细胞培养基中双抗加多或加少的情况?

    如何避免细胞培养基中双抗加多或加少的情况?标准工作浓度:青霉素 100 u/ml + 链霉素 100 μg/ml;商品化双抗母液一般是 100×,也就是1 ml 双抗母液加到 99 ml 完全培养基(1% 体积添加)。一、母液与前期管控(根源减少误差)优先直接采购商品化 100× 双抗母液尽量不要自己粉末称量配制双抗母液。粉末称量容易出现称量误差,直接造成后续每一批培养基整体偏高或偏低;商品化母液......
    发布时间:2026/10/10
  • 双抗加多了会影响细胞的代谢,具体会有哪些表现?

    双抗加多了会影响细胞的代谢,具体会有哪些表现?核心诱因主要是过量链霉素抑制线粒体核糖体翻译,损伤线粒体功能;青霉素本身代谢干扰很弱,毒性贡献很小。分为培养基表观变化、细胞生理表型、分子代谢层面、下游实验结果异常四个层面;注意很多改变属于隐性变化,光看细胞形态不一定能发现。一、培养基上可以直接观察到的表观表现培养基变黄速度明显变快。细胞糖酵解增强,乳酸分泌增加,ph 下降更快,同样细胞密度......
    发布时间:2026/10/10
  • 双抗加多了应该如何处理?

    双抗加多了应该如何处理?先区分轻微过量(1.5‑2 倍) 和严重过量(≥3 倍标准工作浓度),同时看细胞已经在过量培养基里孵育了多久。标准工作浓度:青霉素 100 u/ml,链霉素 100 μg/ml。情况 1:刚配完培养基,还没有铺细胞 / 还没有换液培养基配好才发现加多,细胞还没接触方案 a:直接稀释。用不含双抗的完全培养基稀释到标准工作浓度,混匀后再使用;要确认血清、其他组分比例不......
    发布时间:2026/10/10
  • 细胞培养基中双抗加多了会影响细胞的代谢吗?

    细胞培养基中双抗加多了会影响细胞的代谢吗?双抗加多确实会干扰细胞代谢,并不是完全无毒性,青霉素毒性相对温和,主要的代谢干扰来自高浓度链霉素。作用机制动物细胞质核糖体是 80s,链霉素靶向细菌 30s 核糖体,本应选择性很低;但线粒体核糖体和细菌 70s 核糖体结构同源性很高。当链霉素浓度显著高于工作浓度(>100 μg/ml)之后,......
    发布时间:2026/10/10
  • 双抗在细胞培养基中可以长期添加吗?

    双抗在细胞培养基中可以长期添加吗?不建议常规细胞长期连续添加双抗(青霉素‑链霉素),仅适合短期预防性使用。为什么不建议长期加掩盖低度细菌污染(隐性污染)少量细菌没有被杀死,只是被抗生素抑制生长。肉眼看不到浑浊,但细菌持续存活于体系内。细胞慢慢出现状态变差、增殖变慢,后续一旦撤掉双抗,细菌立刻爆发。这种隐性污染会造成实验结果不稳定,重复性变差。存在累积细胞毒性风险虽然双抗对动物细胞毒性偏低,但长期持......
    发布时间:2026/10/10
  • 细胞培养基中加入双抗的作用是什么?

    细胞培养基中加入双抗的作用是什么?双抗一般指青霉素 g + 链霉素,加到完全培养基里,主要用于抑制细菌污染,是细胞培养的预防性抗生素。各自抑菌机制青霉素(针对革兰阳性菌)抑制细菌细胞壁肽聚糖的合成,细菌分裂时细胞壁合成受阻,细菌裂解死亡;对真核细胞没有细胞壁,所以对动物细胞毒性很低。链霉素(针对革兰阴性菌)作用于细菌核糖体 30s 亚基,阻碍细菌蛋白质合成;同样优先靶向细菌核糖体,动物细胞胞质核糖......
    发布时间:2026/10/10

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