透射电子显微镜（Transmission Electron Microscope，TEM）是使用最为广泛的一类电镜。通过发射电子束从而穿过超薄的样品，同时与样本相互作用，既而形成图像。透射电镜具有分辨率高和放大倍数高的优点。其分辨率为0.1～0.2nm，放大倍数为几万到几十万倍。目前透射电镜已经广泛的应用到癌症研究，病毒学研究，微生物学，细胞学研究等生物领域。

二、实验原理
透射电镜是以电子束透过样品经过聚焦与放大后所产生的物像，投射到荧光屏上或照相底片上进行观察。电子与样品中的原子碰撞而改变方向，从而产生立体角散射。散射角的大小与样品的密度、厚度相关，因此可以形成明暗不同的影像。由于电子易散射或被物体吸收，故穿透力低，必须制备超薄切片(通常为50～100 nm)。要在机体死亡后的数分钟内取材，组织块要小(1mm3以内)，常用戊二醛和双重固定，包埋介质包埋,用超薄切片机切成薄片，再经醋酸铀和柠檬酸铅等进行电子染色。

三、实验流程

1.取材

2.固定

3.脱水

4.包埋

5.固化

6.超薄切片机切片(50-60 nm)

7.3%醋酸铀-枸橼酸铅双染色

8.透射电镜观察，拍片

四、客户提供

组织块、细胞等

五、公司提供

基本实验步骤、药品、样品处理、图片及图片分析

实验周期：2-3周

六、透射电镜取材注意事项

取材是电镜样品制备的第一步，也是十分重要的一步。其操作成功与否直接关系到整个实验的成败。 为了得到好的结果，请务必认真做好最关键的第一步取材。因取材不规范导致实验失败本公司概不负责！取材基本要点：快（1min）、冷（4 ℃）、小（1mm 3 ）、净（无杂质）、准（部位准确）

动植物 组织取材流程及要求：

4．保持低温环境：为降低自溶酶活性，最好在 4℃低温条件下取材，容器和器械预冷；将修整好的标本块放入戊二醛固定液后，普通 4℃冰箱保存。细胞取材流程及要求

取材流程： 细胞直接刮下，细胞悬液离心，弃上清，PBS 清洗 2 次，离心成团，加入 2.5%戊二醛固定液 4℃过夜后快递。悬浮细胞、菌液可直接视为细胞悬浮液操作。