果糖-6-磷酸激酶（6-phosphofructokinase，PFK）试剂盒说明书
分光光度法 50 管/48 样
测定意义
PFK（EC 2.7.1.11）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，负责将果糖-6-磷酸和 ATP 转化为果糖-1,6 二磷酸和 ADP，是糖酵解过程的关键调节酶之一。
测定原理
PFK 催化果糖-6-磷酸和 ATP 生成果糖-1,6-二磷酸和 ADP，丙酮酸激酶和乳酸脱氢酶进一步依次催化 NADH 氧化生成 NAD+，在 340nm 下测定 NADH 下降速率，即可反映 PFK 活性。
需自备的仪器和用品
紫外分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制
提取液：60mL×1 瓶，4℃保存；试剂一：液体 40mL×1 瓶，4℃保存；
试剂二：粉剂×1 瓶，-20℃保存，临用前加入 2.8mL 蒸馏水充分溶解备用；试剂三：粉剂×1 支，4℃保存，临用前加入 260μL 蒸馏水充分溶解备用；试剂四：液体×1 支，4℃保存，临用前加入 260μL 蒸馏水充分溶解备用；
样本的前处理
1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104 个）：提
取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液），超声波破碎细菌
或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）； 8000g 4℃离心 10min，取上
清，置冰上待测。
2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。3、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤和加样表
1、分光光度计预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零。
2、工作液（可测 25 个样）的配制：取 19mL 试剂一和 1.26mL 试剂二充分混匀。3、将工作液置于 37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)预热 10 分钟。4、加样表：
试剂名称（μL） | 测定管 |
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工作液 | 800 |
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样本 | 30 |
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试剂三 | 5 |
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试剂四 | 5 |
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将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中，立即混匀，加试剂四的同时开始计时，记录在
340 nm 波长下 20 秒时的初始吸光度 A1 和 10 分 20 秒时的吸光度 A2，计算ΔA=A1-A2。
注意：不同匀浆组织中PFK活力不一样，做正式试验之前请做1-2只预试，若ΔA>0.5，则说明活力太高，
必须用提取液稀释成适当浓度匀浆上清液（计算公式中乘以相应稀释倍数），或缩短反应时间至 2min 或
5min，使ΔA<0.5，以提高检测灵敏度。
PFK 活力单位的计算
1、血清（浆）PFK 活力的计算:
单位的定义：每毫升血清（浆）每分钟催化 1nmol 果糖-6-磷酸和 1nmolATP 转化为 1nmol 果糖-1,6-二磷酸和 1nmol ADP 定义为一个酶活力单位。
PFK（U/mL）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷V 样÷T=450×ΔA
2、组织、细菌或细胞中 PFK 活力计算：（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化 1nmol 果糖-6-磷酸和 1nmolATP 转化为 1nmol 果糖-1,6-二磷酸和 1nmol ADP 定义为一个酶活力单位。
PFK（U/mg prot）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=450×ΔA÷Cpr
（2）按样本鲜重计算
单位的定义：每 g 组织每分钟催化 1nmol 果糖-6-磷酸和 1nmolATP 转化为 1nmol 果糖-1,6-
二磷酸和 1nmol ADP 定义为一个酶活力单位。
PFK（U/g 鲜重）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(W ×V 样÷V 样总)÷T=450×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化 1nmol 果糖-6-磷酸和 1nmolATP 转化为 1nmol 果糖-1,6-
二磷酸和 1nmol ADP 定义为一个酶活力单位。
PFK（U/104 cell）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.9×ΔA V 反总：反应体系总体
积，8.4×10-4 L；ε：NADH 摩尔消光系数，6.22×103 L / mol /cm；d：
比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.03 mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，10 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500 万。
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