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线粒体苹果酸脱氢酶(MDHm)测试盒/分光光度法
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线粒体苹果酸脱氢酶(MDHm)测试盒说明书
注 意:正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
MDH (EC 1.1.1.37)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,线粒体中 MDH 是 TCA 循环的关键
酶之一,催化苹果酸形成草酰乙酸;相反,胞浆中 MDH 催化草酰乙酸形成苹果酸。草酰乙酸是重要的中
间产物, 连接多条重要的代谢途径。因此,MDH 在细胞多种生理活动中扮演着重要的角色,包括线粒体
的能量代谢、 苹果酸-天冬氨酸穿梭系统、活性氧代谢和抗病性等。根据不同的辅酶特异性,MDH 分为
NAD-依赖的 MDH 和 NADP-依赖的 MDH,细菌中通常只含有 NAD-MDH,在真核细胞中,NAD-MDH 分
布于细胞质和线粒体中。
测定原理:
MDHm 催化 NADH 还原草酰乙酸生成苹果酸,导致 340nm 处光吸收下降。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1 mL 石英比色皿和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
试剂一:液体 50mL×1 瓶,-20℃保存;
试剂二:液体 10mL×1 瓶,-20℃保存;
试剂三:液体 1mL×1 支,-20℃保存;
试剂四、液体 50 mL×1 瓶,在 4℃保存;
试剂五、粉剂×2 支,-20℃保存;临用前加入 300µL 蒸馏水,充分溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
试剂六、粉剂×2 支,-20℃保存;临用前加入 300µL 蒸馏水,充分溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
样本测定的准备:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
① 称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL 试剂一和 10uL 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆液于 600g,4℃离心 5min。
③ 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
④ 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 MDH(此步可选做)。
⑤ 在步骤④中的沉淀中加入 200uL 试剂二和 2uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声3 秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 MDH 测定。
测定步骤:
1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。
2、 将试剂四在 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上。
3、 操作表:
将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中,混匀后立即在 340 nm 波长下记录初始吸光度 A1 和反应 1min
后的吸光度 A2,计算 ΔA=A1-A2。
计算公式中乘以相应稀释倍数。
MDHm 活力单位的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
MDHm(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(V 样×Cpr) ÷T=6430×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
MDHm(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(W× V 样÷V 样总)÷T =1299×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
MDHm(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(2000×V 样÷V 样总)÷T=0.65×ΔA
V 反总:反应体系总体积,8×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.02mL;V 样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,1 min;W:样本质量,g;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;2000:细胞或细菌总数,2000 万。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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