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NCI-H157-Puro+ffluc稳转株
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详细内容
NCI-H157-Puro+ffluc稳转株
英文名称 | NCI-H157-Puro+ffluc polyclonal stable cell line |
产品货号 | XY-H2541 |
中文名称 | ffluc 标记的 NCI-H157 稳转株 |
Lot number | NCI-H157-24D3P |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 多角细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转株; (4)稳转株质检(COA)。 |
完全培养基 | RPMI-1640 + 10% FBS + 1 mM丙酮酸钠+ 1% P/S(选择添加) |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液(VGA-0046-0100) |
存储条件 | 液氮 |

一、细胞背景与构建原理
NCI-H157 细胞系:
来源:该细胞系最初分离自一位非小细胞肺腺癌患者的胸腔积液,具有上皮细胞形态,贴壁生长。
遗传特征:携带 TP53 基因突变,且缺乏 KRAS 突变,常用于肺癌分子机制研究。
稳转株构建:
嘌呤霉素筛选:通过慢病毒或质粒载体将含 Puro 抗性基因的外源 DNA 导入细胞,使用嘌呤霉素(通常浓度 1-10 µg/mL)筛选 2-10 天,杀死未成功整合基因的细胞,存活细胞即为稳定表达外源基因的稳转株。
ffluc 标记:萤火虫荧光素酶基因(ffluc)与 Puro 抗性基因共表达,在 ATP、氧气和荧光素底物存在下可产生生物发光,适用于活体成像和基因表达监测。
二、应用场景
体内肿瘤模型构建:
活体成像:将稳转株接种至免疫缺陷小鼠(如裸鼠、NCG 小鼠),通过腹腔或静脉注射荧光素底物,利用高灵敏度 CCD 相机实时监测肿瘤生长、转移及药物治疗效果。例如,荧光素酶信号强度与肿瘤细胞数量呈线性相关,可定量分析肿瘤负荷。
药效评估:用于评估抗肿瘤药物的体内疗效,通过监测荧光信号变化判断药物对肿瘤细胞的抑制或杀伤作用。
基因表达调控研究:
报告基因检测:ffluc 作为报告基因,可与特定启动子或调控元件连接,研究基因转录活性。例如,将 ffluc 置于缺氧响应元件(HRE)下游,可监测肿瘤细胞在乏氧微环境中的 HIF-1α 活性。
信号通路分析:通过构建信号通路报告系统(如 NF-κB-luc),研究细胞内信号传导机制及药物干预效果。
细胞生物学基础研究:
细胞增殖与凋亡:利用 ffluc 标记追踪细胞在不同处理条件下的存活状态,结合嘌呤霉素筛选验证基因功能。
迁移与侵袭:通过划痕实验或 Transwell 模型,结合活体成像技术,分析稳转株的转移能力及相关分子机制。
三、培养与维护要点
基础培养条件:
培养基:推荐使用 RPMI 1640 培养基,添加 10% 胎牛血清(FBS)、1% 青霉素 - 链霉素,pH 7.2⁻⁷.4。
传代:当细胞密度达 80%-90% 时,用 0.25% 胰蛋白酶消化,按 1:2-1:5 比例传代,避免过度汇合导致细胞状态下降。
稳转株筛选与维持:
嘌呤霉素浓度:初始筛选浓度需通过预实验确定(通常 2-5 µg/mL),维持培养时浓度可降至 1-2 µg/mL 以减少细胞压力。
冻存与复苏:使用含 10% DMSO 的冻存液,于 - 80℃或液氮中保存。复苏时快速解冻,离心去除冻存液后接种至含完全培养基的培养瓶。
质量控制:
STR 鉴定:定期进行 STR 分型检测,确保细胞系身份正确(如 NCI-H157 的 STR 位点包括 D13S317:12、D16S539:12,13 等)。
支原体检测:使用 PCR 或荧光染色法检测,避免污染影响实验结果。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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