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超氧化物歧化酶(SOD)检测试剂盒(总)
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详细内容
超氧化物歧化酶(SOD)检测试剂盒(总)
产品货号:XY9-47103
产品规格及价格:100T/900元
产品简介:
超氧化物岐化酶(Superoxide Dismutase, SOD)是含金属辅基的酶,能催化超氧化物阴离子发生岐化作用,生成过氧化氢(H2O2)和氧气(O2),是生物体内一种重要的抗氧化酶。由于超氧自由基是不稳定的的自由基,寿命极短,SOD活性一般用间接方法测定,并利用各种呈色反应来测定SOD活力,其中显色剂有NBT(四氮唑蓝)、WST-1、WST-8等。
总超氧化物歧化酶(SOD)检测试剂盒(NBT核黄素微板法)(Total Superoxide Dismutase Assay Kit with NBT)是一种基于NBT的显色反应,通过比色来检测组织、细胞、植物、血清或其它样品中SOD即超氧化物歧化酶活性的试剂盒,其检测原理是利用SOD抑制NBT在光照下的还原作用来确定酶活性大小,在有氧化合物存在的情况核黄素被光还原,后经一系列的反应可将NBT还原为蓝色的甲臜(formazan),后者在560nm处有强吸收,SOD可清除超氧阴离子(O2.-),从而抑制了甲臜的形成,反应液蓝色愈深说明超氧化物岐化酶活性愈低,反之则酶活性愈高,据此通过酶标仪比色分析就可以计算出超氧化物岐化酶活性水平。
本试剂盒仅用于科研领域,不宜用于临床诊断或其他用途。
可以提供各种细胞检测试剂盒。包括细胞凋亡、活性、增殖、毒性、活性氧、周期、细胞代谢、氧化应激、膜流动性、膜电位、膜通透性转换孔、细胞耗氧率、胞外酸化、细胞内pH、细胞粘附、细胞自噬等数百种细胞检测试剂盒产品。
产品应用:
微孔板,酶标仪

使用方法:
1.试剂盒中的低温试剂避免反复冻融,以免失效或效率下降。
2.待测样品⁻⁷0℃可保存 1 个月,需注意反复冻融会导致 SOD 部分失活。
3.细胞或组织等样品制备时,不能采用含有 Triton X-100 等去垢剂的溶液,否则会干扰本试剂盒的检测。
4.抗氧化物会对本试剂盒的检测产生干扰,例如 0.1mM ascorbic acid,5mM GSH 都会使测定出来的吸光度显著升高。
5.对于植物样品,研磨处理应迅速,以免 SOD 酶活下降,尽量处于冰浴状态处理。
6.如果无 4000Lx 日光,可 200W 在 10~12cm 处垂直照射 20min;在超净工作台 5cm 垂直照射 30min 左右;在强太阳光下垂直照射 30min 左右。
7.一般要求各孔受光情况一致,所有反应管应排列在与日光灯管平行的直线上。
8.反应温度控制在 25℃,视酶活性高低适当调整反应时间;温度较高时,光照时间应缩短;温度较低时,光照时间相应延长。
9.所用离心管或 96 孔板应洁净透明,透光性好。
10.如果配制的 NBT 酶工作液出现淡黄色沉淀或絮状物应弃用,否则效果不佳。
11.如果用分光光度计,比色杯光径应为 1cm,加入的上清量应根据比色杯的最小量程而定。
一、样本的前处理:
1.血浆或含红细胞的样品:
从待测样品中分理出的血清或血浆不应有溶血,如果含有应去除红细胞后检测,如超过检测范围,用 SOD 提取液稀释后检测。
血清去除红细胞的简易方法如下:
用抗凝管收集血液,颠倒混匀,取至少 500µl 全血,4 3000g ℃ 离心 5min,转移上清至另一新的 1ml 离心管中,适量生理盐水稀释后待测,亦可采用红细胞裂解液去除红细胞
2、组织样品:
动物用含有 20U/ml Heparin 的生理盐水(0.9% NaCl containing 20U/ml Heparin)灌流清除血液后获取组织样品,按照每 100mg 组织加入 500µl SOD 提取液的比例,用玻璃匀浆器在 4℃或冰浴匀浆,4 4000g ℃ 离心 0min,取上清液(SOD 粗提液)用于酶活性的测定。
3、细胞样品:
对于贴壁细胞,由于后续用于酶活性的测定,避免使用胰酶消化细胞,可以使用细胞刮或 EDTA 处理细胞并收集细胞,细胞用无菌的 PBS 或生理盐水洗涤 1 次,按照每 106 细胞加入 300~500µl SOD 提取液的比例,用玻璃匀浆器在 4℃或冰浴匀浆,4 10000g ℃ 离心 10min,取上清液(SOD 粗提液)用于酶活性的测定。
4、植物样品:
准确称取植物材料(果肉或者去叶脉的叶片)0.4g,剪碎,置于 4℃预冷的研钵或匀浆器中,加入预冷提取液1ml,低温研磨至匀浆后转移至离心管,用 3ml 提取液冲洗研钵或匀浆器并转入离心管,加提取液至总体积为 4ml,4 10000r/min ℃ 离心 20min,上清液为酶提取液,上清液可用于 SOD 的检测。
注意:如果 SOD 酶活性较低,应相应减少提取液的总体积,以便提高 SOD 酶的浓度。
5、上述样品准备完毕后可以用 BCA 法测定蛋白浓度,通常 10~20µg 蛋白的细胞或组织匀浆液样品其中的SOD 平均活力约 1 个活力单位(不同细胞和组织的差异会比较大,该活力范围仅作为初步的参考)。
每种样品准备 20~100µg 蛋白量通常已经足够用于后续检测,根据蛋白浓度和预计的蛋白使用量,用本试剂盒提供的 SOD 提取液适当稀释样品,例如小鼠肝脏组织 10%匀浆液(组织和匀浆液的重量比为 10%)上清,通常需要稀释 10~100 倍,准备好的样品如果当天测定,可以冰浴保存;如果当天不能完成测定,可以-20℃冻存,但建议尽量当天完成测定。
二、NBT 酶工作液
按照每个反应 160µl 的体积,均匀混合 100µl SOD 提取液、30µl NBT 显色液、30µl 酶溶液,即可配置成
160µl NBT 酶工作液;根据待检测样品(包括标准品)的数量,配置适量的 NBT 酶工作液。
具体配置方法可以参考下表,配制好的 NBT 酶工作液 4℃或冰浴保存,可以在当天使用,但建议尽量现配现用。
注意:由于酶溶液的用量较少且易沉降,必须注意在使用前先轻轻离心一下,然后适当混匀后再使用。
三、(选做)准备 SOD 标准品:需自备 SOD 标准品,用本试剂盒提供的 SOD 提取液将 SOD 标准品稀释至如下系列浓度:200、100、50、20、10、5、2U/ml,各取 20µl 参考样品进行检测。
注意:
为避免稀释后 SOD 酶活性的下降, SOD 标准品宜现稀释现使用,本试剂盒对于 SOD 的检测并不需要 SOD作为标准品,但可使用 SOD 标准品作为阳性对照或作为对 SOD 活性定量的参考。
四、SOD 加样
参考下表使用 96 孔板设置空白对照孔、光照对照孔、样品孔,并按下表依次加入待测样品和其它各种溶液,加入反应启动工作液后充分混匀。
注意:加入反应启动工作液后反应即会开始,可以在低温操作或用排枪操作以减小各孔间因加入反应启动工
作液的时间先后差异而导致的误差。
五、SOD 测定:
混匀,取空白对照孔置于暗处,其他各孔置于 4000Lx 日光下反应 20min,各孔受光情况应一致,温度高时时间缩短,低时延长;反应结束后,以不照光的空白对照孔调零,用酶标仪测定 560nm 处吸光度。
六、计算:
SOD 活力单位的定义:以抑制 NBT 光化还原的 50%为一个酶活性单位(U)。
液体中总 SOD 活力(U/ml)=(A 光照-A 样品)/(50%×A 光照×VT)
组织、细胞匀浆液中总 SOD 活力(U/g)=(A 光照-A 样品)×V/(50%×A 光照×VT×W)
血液中总 SOD 活力(U/gHb)
=(A 光照-A 样品)×V×C/(50%×A 光照×VT×Hb)式中:A 光照=光照对照孔的吸光度
A 样品=样品孔的吸光度
V=样品液总体积(ml)
VT=测定时样品所用体积(ml)
W=样品鲜质量(g)
C=1ml/采血量(ml)
Hb=血红蛋白含量(gHb/ml)
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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