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SN/T 1902-2007果蔬菜中吡虫啉、吡虫清残留量的测定 高效液相色谱法

提供者:广州信谱徕科学仪器有限公司   发布时间:2024/12/4 15:58:52  阅读次数:123次  进入该公司店铺

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SN_T 1902-2007 水果蔬菜中吡虫啉、吡虫清残留量的测定 高效液相色谱法.jpg

中华人民共和国出入境检验检疫行业标准

SN/T 1902-2007

水果蔬菜中吡虫啉、吡虫清残留量的测定

高效液相色谱法

Determination of imidacloprid and acetamiprid

residues in fruits and vegetables-HP LC

1范围

本标准规定了水果蔬菜中吡虫啉、吡虫清残留量的高效液相色谱测定方法。

本标准适用于番茄、黄瓜、柑橘中吡虫啉、吡虫清残留量的检验。

2测定方法

2.1 试样制备

将所取原始样品缩分出1 kg,取可食部分,经组织捣碎,均分成两份,装入洁净容器内,作为试样,密封,并标明标记。

2.2试样保存

将试样于-18℃以下冷冻保存。

注:在试样制备过程中,应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。

2.3 方法提要

试样中残留的吡虫啉、吡虫清用乙腈提取,提取液经弗罗里矽柱净化,浓缩、定容后,用配有紫外检测器或二极管阵列检测器的高效液相色谱仪测定。

2.4试剂和材料

除另有规定外,所用试剂均为分析纯,水为蒸馏水或去离子水。

2.4.1乙腈:HPLC级。

2.4.2正己烷。

2.4.3 丙酮。

2.4.4 氯化钠:140℃烘烤4 h。

2.4.5吡虫啉标准品:纯度大于等于96%。

2.4.6吡虫清标准品:纯度大于等于96%。

2.4.7吡虫啉、吡虫清标准溶液:准确称取适量的吡虫啉、吡虫清标准品,用乙腈配制成100μg/mL的单个标准储备液,根据需要再用乙腈+水(30+70)稀释成适当浓度的混合标准工作溶液。

2.4.8固相萃取柱,弗罗里矽柱(Florisil),体积3mL小柱,填充物500mg。

2.5 仪器设备

2.5.1 高效液相色谱仪:配有紫外检测器或二极管阵列检测器。

2.5.2振荡器。

2.5.3 氮吹仪。

2.5.4旋转蒸发仪。

2.5.5 漩涡混合器。

2.5.6 微量注射器:100μL。

2.6 测定步骤

2.6.1提取

称取25 g试样(精确至0.01 g),置于250 mL具塞锥形瓶中,准确加入50.0 ml乙腈,放置2 h,振荡提取30 min后用滤纸过滤。滤液收集到装有5 g~7 g氯化钠的100 mL具塞量筒中,盖上塞子,剧烈振荡1min,在室温下静止10min,使乙腈相和水相分层。

从100 mL具塞量筒中吸取10.0 mL乙腈溶液,移入125 mL梨形瓶中,于50℃水浴中旋转浓缩至近干。加入10mL丙酮+正己烷(10+90)溶解。

2.6.2净化

将弗罗里矽柱用2 mL正己烷预淋洗,当溶剂液面到达柱吸附层表面时,立即倒入样品溶液,弃去流出液。用5 ml,丙酮+正己烷(10+90)涮洗梨形瓶后淋洗弗罗里矽柱,弃去流出液。用10 mL丙酮+正己烷(20+80)分两次淋洗弗罗里矽柱,用15 mL刻度离心管接收洗脱液。将盛有洗脱液的离心管置于氮吹仪上,在50℃水浴下,氮吹至近干,用乙腈+水(30 +70)定容至2.0 mL,在漩涡混合器上混匀,经0.45μm滤膜过滤后,待测。

2.6.3 测定

2.6.3.1液相色谱参考条件

a) 色谱柱:ODS-C18,5μm,250 mm×4 mm(内径)或相当柱;

b) 色谱柱温度:40℃;

c) 流动相:乙腈+水,梯度:0 min,(5+95);15 min,(25+75);20 min,(5+95);

d) 流速:1.0 mI/min;

e) 检测波长:258 nm;

f) 进样量:20μL。

2.6.3.2色谱测定

根据样液中被测农药残留限(xian)量要求,选定浓度相近的混合标准工作溶液。混合标准工作溶液和待测液中农药的含量在仪器检测的线性范围内,按上述色谱条件进行测定,吡虫啉和吡虫清的保留时间约为13 min和15 min。标准品的液相色谱图参见附录A。

2.6.4 空白试验

除不加试样外,按上述测定步骤进行。

2.7结果的计算和表达

按式(1)计算试样中吡虫啉、吡虫清的残留量,计算结果需将空白值扣除。

image.png

式中:

X——试样中吡虫啉、吡虫清含量,单位为毫克每千克(mg/kg);

A——试样中吡虫啉、吡虫清的峰面积;

c——标准工作液中吡虫啉、吡虫清的浓度,单位为微克每毫升(μg/mL);

V——样液最终定容体积,单位为毫升(mL);

As——标准工作液中吡虫啉、吡虫清的峰面积;

m——最终样液所代表的试样量,单位为克(g)。

3测定低限、回收率

3.1测定低限

本方法测定低限为0. 02 mg/kg.

3.2 回收率

3.2.1番茄中吡虫啉、吡虫清的添加浓度及其回收率的实验数据:

——添加浓度在0.02mg/kg时,吡虫啉回收率为91.4%~109%,吡虫清回收率为95.5%~108% ;

——添加浓度在0.05 mg/kg时,吡虫啉回收率为89.2%~ 101%,吡虫清回收率为90.0%~102%;

——添加浓度在0.10 mg/kg时,吡虫啉回收率为80.7%~88.5%,吡虫清回收率为85.5%~103%。

3.2.2黄瓜中吡虫啉、吡虫清的添加浓度及其回收率的实验数据:

——-添加浓度在0.02 mg/kg时,吡虫啉回收率为98.5%~ 106%,吡虫清回收率为94.0%~

106%;

——添加浓度在0.05mg/kg时,吡虫啉回收率为95.0%~106%,吡虫清回收率为90.0%~102% ;

——添加浓度在0.10mg/kg时,吡虫啉回收率为81.4%~97.2%,吡虫清回收率为96.2%~109 %。

3.2.3柑橘中吡虫啉、吡虫清的添加浓度及其回收率的实验数据:

——添加浓度在0.02 mg/kg时,吡虫啉回收率为94.5%~102%,吡虫清回收率为90.0%~99.0%;

——添加浓度在0.05 mg/kg时,吡虫啉回收率为88.0%~98.4%,吡虫清回收率为84.4%~93.8%;

——添加浓度在0.10 mg/kg时,吡虫清回收率为84.9%~ 109%,吡虫清回收率为87.3%~99.5%。



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