血清（血浆）样本的制备

血清和血浆均是不含细胞（包括血小板）等有形成分的血液液体部分，其主要区别是血清不含凝血因子和血小板，血浆则含有凝血因子，它们的制备方法如下：

1) 血清的制备：获得的血液不能抗凝，盛于离心管或可以离心的器皿中，静置或置于37℃环境中促其凝固，待血液凝固后，将其平衡并离心（一般为1000-2000g，离心 5～10 min），得到的上清液即为血清，可小心将上清吸出（注意切勿吸出细胞成分），分装备用。

2) 血浆的制备：在盛血的容器中先加人一定比例的抗凝剂（抗凝剂：血液 = 1：9，将血液加到一定量后颠倒混匀，离心（离心条件同上）后所得的上清液即为血浆。初用者将上清移至另一清洁容器，吸出血浆时用毛细吸管贴着液面逐渐往下吸，切忌不能吸起细胞成分。

组织或细胞匀浆样本的制备

收集组织或细胞样本，加入匀浆介质后进行匀浆，有4种匀浆方式可以选择。

1) 手工匀浆：将样本（含匀浆介质）倒入玻璃匀浆管中，左手持匀浆管将下端插入盛有冰水混合物的容器中，右手将捣杆垂直插入匀浆管中，上下转动研磨数十次（6-8 min），使组织匀浆化。

2) 机械匀浆：将已称重的组织装入EP管，加入匀浆介质，用组织匀浆机，在冰水浴条件下，60 Hz，90s研磨制成组织匀浆，皮肤、肌肉组织及植物组织等可适当延长匀浆时间。

3) 超声破碎：用超声波发生器以振幅14 µm超声处理30s，在冰水浴条件下，破碎细胞；或者用超声波破碎仪，200 W，2s/次，间隙3s进行处理，总时间5min。

4) 反复冻融：适用于细胞样本，即用低渗液或双蒸水重悬细胞，再将细胞悬液进行“冷冻-融化-冷冻"循环，重复3次左右。

值得注意的是，此方法使的某些酶的活力受影响。因此，检测细胞样本的酶活力时不推荐使用此方法。