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Na+k+ ——ATP酶测试盒/分光光度法
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详细内容
货号:XYP9007
Na+K+ ——ATP酶测试盒说明书
注 意 :正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
Na+K+- ATP 酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中,可催化 ATP 水解生成 ADP 和无机磷。
测定原理:
Na+K+-ATP 酶分解 ATP 生成 ADP 及无机磷,通过测定无机磷的量来确定 ATP 酶活性。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
提取液:液体 50mL×1 瓶,4℃保存。
试剂一:液体 10mL×1 瓶,4℃保存。
试剂二:液体 5mL×1 瓶,4℃保存。
试剂三:液体 5ml×1 瓶,4℃保存。
试剂四:粉剂×3 支,-20℃保存。用时每支加 1mL 蒸馏水;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
试剂五:液体 5mL×1 瓶,4℃保存。
试剂六:粉剂×1 瓶,4℃保存。用时加入 3mL 蒸馏水, 4℃保存。
试剂七:粉剂×1 瓶, 4℃保存。用时加入 25mL 蒸馏水,溶解后 4℃保存一周。
试剂八:粉剂×1 瓶, 4℃保存。用时加入 25mL 蒸馏水,溶解后 4℃保存一周。
试剂九: 液体 25mL×1 瓶,室温保存。
试剂十:10mmol/L 标准磷贮备液 10mL×1 瓶,4℃保存。
0.5µmol/mL 标准磷应用液配制:将贮备液 20 倍稀释,即取 0.1mL 试剂十加 1.9mL 蒸馏水充分混匀。
定磷剂的配制:按 H2O: 试剂七:试剂八:试剂九=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染,定磷剂现用现配。
样品酶液的制备:
1、细菌、细胞或组织样品的制备:
细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2、血清(浆)样品:直接检测。
操作步骤:
1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 660nm,蒸馏水调零。
2、酶促反应(在 EP 管中加入下列试剂)

注意:
1、由于每一个样都必须做对照,本试剂盒 50 管保证测 24 份 Na+K+-ATP 酶。
2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。
3、空白管和标准管只要做一管。
计算 :

C 标准管:标准管浓度,0.5µmol/mL;V 总:酶促反应总体积,0.5mL;V 样:加入样本体积,0.2mL ;V 样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,1/6 小时;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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