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详细内容
HDF-a-GFP-Puro稳转株
英文名称 | HDF-a-GFP-Puro polyclonal stable cell line |
产品货号 | XY-H1849 |
中文名称 | GFP 标记的 HDF-a 稳转株 |
Lot number | HDF-a-10A1P |
细胞规格 | 复苏细胞 (T25细胞瓶) 或1 × 106 细胞冻存细胞 |
细胞形态 | 成纤维细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞株 构建流程 | (1)构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒; (2)慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞; (3)用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转株; (4)稳转株质检(COA)。 |
完全培养基 | RPMI-1640 + 10% FBS + 1% P/S(选择添加) |
培养条件 | (1) 气相:95%空气,5% CO2;(2) 温度:37 ℃。 |
细胞冻存 | 无血清冻存液 |
存储条件 | 液氮 |

一、基本组成与特性
细胞背景
HDF-a:通常指人真皮成纤维细胞(Human Dermal Fibroblasts,HDF)的永生化或特定改造版本(如经病毒转化等),具有无限增殖能力,便于长期实验研究。
GFP:绿色荧光蛋白(Green Fluorescent Protein),作为报告基因,表达后可使细胞在荧光显微镜下发出绿色荧光,用于实时追踪细胞位置、观察细胞形态或监测基因表达情况。
Puro:嘌呤霉素(Puromycin)抗性基因,赋予细胞对嘌呤霉素的耐药性,常用于稳转株筛选 —— 在培养基中添加嘌呤霉素可淘汰未成功整合目的基因的细胞,保留稳定表达 GFP 的阳性克隆。
核心特性
稳定表达:GFP 基因通过载体(如慢病毒、质粒)整合到细胞基因组中,可随细胞分裂稳定遗传,避免瞬时转染的表达时效性问题。
可筛选性:利用嘌呤霉素抗性高效筛选阳性细胞,确保群体中几乎所有细胞均表达 GFP,适合需要均一性荧光标记的实验(如细胞共培养、动物体内示踪)。
二、构建流程与技术要点
载体设计
构建含 GFP 基因和 Puro 抗性基因的表达载体(如质粒或病毒载体,常用慢病毒载体提高整合效率)。
载体需包含启动子(如 CMV 启动子)驱动 GFP 表达,并确保 Puro 抗性基因与 GFP 基因共表达(如通过 IRES 序列或双顺反子结构)。
细胞转染 / 感染
转染:对于易转染的细胞系,可通过脂质体或电穿孔法将载体导入 HDF-a 细胞。
感染:若细胞转染效率低,采用慢病毒或逆转录病毒包装系统,制备含目的基因的病毒颗粒,感染 HDF-a 细胞。
筛选与鉴定
嘌呤霉素筛选:转染 / 感染后 48⁻⁷2 小时,向培养基中添加嘌呤霉素(浓度需预实验优化,通常为 1-10 µg/mL),未成功整合抗性基因的细胞死亡,存活细胞形成单克隆。
荧光检测:通过荧光显微镜或流式细胞术(FACS)验证 GFP 表达效率,确保阳性率接近 100%。
基因组鉴定:通过 PCR 或测序确认 GFP 基因整合到细胞基因组中。
三、典型应用场景
细胞示踪与迁移研究
在体外共培养体系或体内动物模型(如移植到免疫缺陷小鼠)中,利用 GFP 荧光追踪 HDF-a 细胞的迁移路径、分布及存活情况。
示例:研究成纤维细胞在伤口愈合模型中的迁移能力,或肿瘤微环境中基质细胞的分布。
基因表达与功能分析
将 GFP 与目的基因融合表达,通过荧光强度反映目的基因的表达水平,或利用 GFP 标签进行免疫共沉淀(Co-IP)等蛋白互作研究。
药物递送与疗效评估
作为模型细胞验证纳米药物载体的靶向性:GFP 标记的细胞与载药体系共孵育,通过荧光强度变化评估药物摄取效率。
在药物毒性实验中,结合流式细胞术分析 GFP 阳性细胞的存活率。
组织工程与再生医学
构建 GFP 标记的 HDF-a 稳转株用于组织构建(如皮肤等效物),通过荧光成像监测细胞在三维支架中的分布和分化状态。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。
以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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