中国骄傲系列动物脑立体定位仪
ZH-蓝星C/S数显式脑立体定位仪 小动物脑定位仪 数字式脑立体定位仪
| 刻度易读: 所有的刻度都起源于“U”形臂的开放端，终止于内侧，这种方式与大多数研究工作相适应，便于读数。 | 标度数字非常清晰，与测量标尺配合精密，使读数分辩率精确至0.1mm |
| 移动平滑:三角形的导轨使之能够进行快速稳确定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极，锁定装置能够将电极以任何角度固定，不会滑脱。操作臂可以从支架上旋转360度，以便于实验动物的固定。 | 适用动物: ZH-蓝星C型脑立体定位仪采用开放式架构，做不同的动物只需更换不能动物的适配器即可（标准配置适用于大鼠）。适用动物有小鼠、大鼠、豚鼠、鸟类、兔、猫、狗等动物 |
| 双操作臂模式:该定位仪在两侧同时装配操作臂 | 兼容性:ZH-蓝星C型脑立体定位仪可与国内外生产的微量注射泵、柔型颅钻、各种电极、适配器等配套使用 |
JK023脑立体定位仪、大小鼠脑立体定位仪
脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备，利用颅骨表面的标志（如前囟点）为基本参考点，通过三维移动来确定动物大脑皮层下某神经结构（核团）的位置，进而完成对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导定位等操作，可用于帕金森氏病动物模型建立、癫痫动物模型建立、脑内肿瘤模型建立、学习记忆、脑内神经干细胞移植、脑缺血等研究。
DW145蓝星KJD型脑立体定位仪
SX-5001脑立体定位仪及其配套设备
脑立体定位仪是利用颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三度坐标系统，来确定皮层下某些神经结构的位置，以便在非直视暴露下对其进行定向的刺激、破坏、注射药物、引导电位等研究。 脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备, 用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作，可用于帕金森氏病动物模型建立，癫痫动物模型建立，脑内肿瘤模型建立，学习记忆，脑内神经干细胞移植，脑缺血等研究。
本公司生产的Ｕ型框架标准定位仪，结构坚固，可以适用于多种多种动物实验（大鼠、小鼠、小鸟、猫、蜥蜴等爬行类动物及豚鼠等，是科研人员定位小动物的立体位置的最佳选择．
产品特点：
1.所有的刻度方向均从”Ｕ”的开口端，更易读数，也是科学家喜欢的工作位置．
2.标尺上的刻度均采用激光雕刻，并经特殊处理，经久耐用，且不易产生疲劳．
3.独特的耳杆设计，一端为18 度，另一端为45 度，满足不同的工作需求.
4.操作臂移动范围上下、左右、前后可达80mm
5.垂直方向可180 度旋转并随时锁定任意位置
6 水平方向可360 度旋转并随时锁定任意位置
7.操作臂内置铜轴套，方便接地进行电生理实验
8.垂直锁紧和定位钮分离，保证任意角度的精确操作
9..精确设计的侧向旋转操作空间，旋钮和U 型座距离28mm
10.耳杆锁紧方式采用压板方式
11.旋钮和丝杆的配合采用独立锁紧方式
12.三头丝杠的独特设计，操作更加稳固和平滑．
主要功能：
- 标尺易读数
所有的标尺都定位在从一个开放的U型末端开始读数，这个位置也是大多数科学家首选的位置。标尺上的数字大，易于读数。标尺采用激光雕刻，可使三条标尺都能达到最佳的耐久度。标尺的精确度达到了0.1mm。
- 移动平滑
标准型脑立体定位仪采用了独一无二的三线螺纹，可实现最佳的位置定位，定位过程平滑，线性。
- 全方位调节
通过引导螺纹，操作臂可以控制左右和上下方向的移动，前后控制通过楔形榫头来进行，在每个方向上都可以移动80mm。通用关节使操作者可以在上下或左右平面上，让夹持器的最大转动达到90度。改进型的锁定部件可以让脑立体定位仪锁定在任何角度而不发生滑动，当然也提供了90度垂直方面的绝对锁定。
操作者可以在实验过程中，通过摆动关节让操作臂或夹持器移动到操作区域以外，待需要的时候再可靠的回到原点。
- 电生理操作方便
操作臂上整合的黄铜套管使接地方便，可以直接接到操作臂的金属部分上，甚至夹持器上都可以。
进口脑立体定位仪产品描述：
久经时间考验的U型框架设计，坚固的结构以及可配套用于几乎所有实验动物的适配器，这些都保证了本产品是脑立体定位仪的最佳选择。
一.仪器特点
| 1．标尺易读数 所有的标尺都定位在从一个开放的U型末端开始读数，这个位置也是大多数科学家首选的位置。标尺上的数字大，易于读数。标尺采用激光雕刻，可使三条标尺都能达到最佳的耐久度。标尺的精确度达到了0.1mm； |
| 2．移动平滑 标准型脑立体定位仪采用了独一无二的三线螺纹，可实现最佳的位置定位，定位过程平滑，线性； |
| 3．全方位调节 通过引导螺纹，操作臂可以控制左右和上下方向的移动，前后控制通过楔形榫头来进行，在每个方向上都可以移动80mm。通用关节使操作者可以在上下或左右平面上，让夹持器的最大转动达到90度。改进型的锁定部件可以让脑立体定位仪锁定在任何角度而不发生滑动，当然也提供了90度垂直方面的绝对锁定。 4．操作者可以在实验过程中，通过摆动关节让操作臂或夹持器移动到操作区域以外，待需要的时候再可靠的回到原点； |
| 5．电生理操作方便 操作臂上整合的黄铜套管使接地方便，可以直接接到操作臂的金属部分上，甚至夹持器上都可以； 6．双操作臂型号 51600型双臂标准系列脑立体定位仪在两边都有3向定位的操作臂，第二条操作臂可以根据手的习惯适当的扭转。两个操作臂在进行双注射或是边刺激边记录的时候，就非常有必要了； |
| 7．包括的组件 51600和51603都包含一个标准型基座，操作臂，51631标准夹持器，51621大鼠适配器（鼻夹钳和18°耳棒）； 二.实验过程 1. 首先参照大鼠脑立体定位图谱或者文献确定脑内注射部位的坐标，包括前囟前或后多少mm，中线左或右多少mm，颅骨下深度为多少mm。 2. 麻醉大鼠，然后固定在脑立体定位仪上，主要是固定鼻端和两耳部位，固定后大鼠的头部是不能动的。 3. 剪去大鼠头顶部毛，皮肤表面消毒，然后根据需要纵向或者横向剪开皮肤，用棉球和眼科剪刀除去颅骨表面的脑膜，过一会颅骨干燥后找到前囟部位（靠前部的十字交叉点），以前囟部位为原点，参考定位坐标把注射针移动到注射部位的上方； 4. 在颅骨相应的位置用签字笔点一个原点，移开注射针，用牙科转在注射部位转一个小孔，如果出血的话及时止血，再把注射针移回注射部位上方，吸入注射药物，然后再参照定位注射坐标把注射针移动到注射部位，开始缓慢注入药物，注射后留针一会，再缓慢把注射针移出脑内，缝合皮肤，肌肉注射青霉素抗感染，把动物放回饲养笼内，术后注意保温。 |
大小鼠脑切片模具：
一、介绍：脑切片模具包括大鼠脑模具和小鼠脑模具。脑模具经过精密机械加工和高度抛光，可确保切片过程的可重复性。使用材料为有铝合金，结实耐用，可被加热、冷却、高压灭菌、擦洗，经得起苛刻的使用条件。冠状脑模具具有矢状中线，可方便的分离左右脑半球。切片精度精确至1 mm，小鼠脑模具也适用于新生大鼠。二、规格：
| 脑模具 大鼠，175g-300g，冠状切片，不锈钢 |
| 脑模具 大鼠，175g-300g，矢状切片，不锈钢 |
| 脑模具 大鼠，300g-600g，冠状切片，不锈钢 |
| 脑模具 大鼠，300g-600g，矢状切片，不锈钢 |
| 脑模具 小鼠0-175g，冠状切片，不锈钢 |
| 脑模具 小鼠0-175g，矢状切片，不锈钢 |
三、技术参数1、间距规格： 长*宽*高＝45*28*24，每个槽间隙为1ＭＭ；2、最大长度：45；3、最大宽度：28；4、误差：0.01；5、材料：不锈钢，表面喷砂处理；6、重量：0.28kg；四、仪器质量提示： 1）大小鼠脑切片模具看槽的外观，普通产品加工粗糙，槽多有变形，且切口不平滑，这样的产品在放置刀片时就会遇到麻烦，有的刀片放不进，有的放进去了，取出来麻烦，而且我们切出来的组织也不均匀，严重影响实验效果。我公司的产品均采用先进的加工设备精加工而成，切口平滑均匀，而且不会有任何变形，是你实验室的理想助手。 2）材料的好坏，市面上有铝合金，有机玻璃及普通不锈钢三种材料，前两种材料易粘组织，铝合金和普通不锈钢的材料不耐腐蚀，用户只将其半裸放在盐水中静置12小时左右，就可以看见上面锈迹斑斑，且严重的有很多锈穿的小孔出现，这种材料是经不起我们苛刻的实验条件的。我们的材料是采用进口不锈 钢，可随意放在任意盐水浓度中测试，均不会有锈迹出现。
68000数字式脑立体定位仪
| 瑞沃德脑立体定位仪 瑞沃德68000系列小动物脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备, 用于完成对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作，可用于帕金森氏病动物模型建立、癫痫动物模型建立、脑内肿瘤模型建立、学习记忆、脑内神经干细胞移植、脑缺血等研究。 根据国内多位神经科学研究领域专家的建议并参考国外多种同类产品的性能特点，瑞沃德生命科技公司设计开发了MP8000系列脑立体定位仪，该系列产品采取通用的U形底座开放式结构，方便进行多角度的操作；可适用于多种动物实验（大鼠、小鼠、小鸟、猫及豚鼠等）；可垂直方向180度旋转、水平方向360度旋转的操作臂为研究人员提供灵活、精确的定位；MP8000系列还配有各种规格的探针、电极固定夹持器，并可以根据用户的不同实验要求提供定制的固定夹持器以满足各种实验要求。 主要性能特点： 选配不同动物适配器大鼠、小鼠、小鸟、猫、壁虎及豚鼠 操作臂移动范围上下、左右、前后可达80mm 垂直方向可180度旋转并随时锁定任意位置 水平方向可360度旋转并随时锁定任意位置 操作臂上下、左右、前后操作精度：100um 配置微推进器上下操作精度：10um 操作臂内置铜轴套，方便接地进行电生理实验 可配套微量注射泵、显微摄像装置、颅钻使用 具有双操作臂配置，方便同时进行多种实验步骤 激光刻度及开放式的U形底座设计，读数更方便 三头丝杆设计，操作臂上下、左右、前后移动更精确平滑 不同温度下操作仍可保持良好的精确性与灵活性 特殊处理的材料表面，容易清洗并保持良好的清洁度 产品配置 （1）8501-U型底座 （2）8401-单操作臂或8402-双操作臂 （3）8201-标准夹持器 （4）8301-18度耳杆，可选配8302-45度耳杆 （5）8020-大鼠适配器，可选配8010-小鼠适配器
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MP8002
MP8001 |
| 数字式脑立体定位仪 是目前世界上有性价比的数字式脑立体定位仪，具有标准型脑立体定位仪的所有特点，并在原有标准脑立体定位仪的三维操作臂基础上增加了位移传感器及LCD显示屏，直接读取数字式移动距离，极大地方便了实验读数过程；三维操作臂显示屏任意点置零，在Bregma点根据图谱直接进行定位，避免二次读数及计算，简化了实验操作过程；移动距离读数精度为10微米，满足更高实验要求；传感器及LCD显示屏内置一体嵌入操作臂，不需额外放置显示屏及连接线，外表美观并节省操作台空间；纽扣电池使用寿命长，更换维护方便。 |
MP8003 |
| 微推进器 在进行电生理刺激及记录等实验中，需要进行更精细的电极操作，通过配置微推进器，将垂直方向的操作精度提高到10um,满足实验要求，并可根据不同电极定制头部固定器 |
MP8101 |
| 夹持器 研究人员在不同实验中会采用不同的电极、导管、探针、微量注射器、微量注射泵和颅钻等，我们提供了多种型号夹持器可供选择，直径从0.2mm-12mm,也可以根据研究人员的要求进行定制，满足不同实验的要求。 MP8201 MP8205和MP8204 |
MP8202和MP8203 |
| 耳杆 可以提供8301-18度和8302-45度耳杆，采用激光刻度精确固定，18度耳杆可以通过穿透耳膜方式更紧密地固定头部，45度耳杆采取钝角方式，不能够穿透耳膜。 |
MP8301和MP8302 |
| 耳杆适配器 耳杆适配器可以在定位仪U形底座外对动物进行固定，然后夹持到耳杆，方便动物穿刺等实验操作，适用于18度耳杆配合一起使用。 |
MP8060 |
| 大鼠适配器 大鼠适配器是脑立体定位仪的默认配置，通过一对耳杆、鼻和门齿夹固定大鼠头部，可以通过燕尾槽上下移动30mm并具有100um的精度，水平方向可以达到50mm的移动距离，满足不同体重大鼠的固定。大鼠适配器默认配置为18度耳杆和门齿夹，可以选配45度耳杆。 |
MP8020 |
| 小鼠适配器 小鼠适配器通过上腭和门齿夹固定头部，同时配有耳杆。头部可以上下调整使头骨处于水平或一定的角度。小鼠与幼大鼠的头骨相对大鼠的头骨很薄，如果将耳杆插入小鼠的耳内，头骨容易变形并影响呼吸。大部分的研究人员会选择只通过上腭和门齿固定方式，相对于耳杆方式会降低稳定性，在使用小鼠适配器时需要具有更多的操作经验。 |
MP8010 |
| 小鼠适配器 该小鼠适配器耳杆采用树脂作为材料，并对尖端进行适合的锥度处理，既能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤，两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节，并带有刻度，适合不同的角度进行实验。 |
MP8030 |
| 豚鼠适配器 豚鼠适配器，通过45度耳杆、鼻和门齿夹固定大鼠头部，豚鼠的鼻夹相对大鼠可以伸到门齿更远的位置，可以通过燕尾槽上下移动30mm，水平方向可以达到50mm的移动距离，满足不同体重豚鼠的固定。 |
MP8050 |
| 猫/猴适配器 猫与小猴适配器包括耳杆和固定底座，通过耳部、眼窝和牙齿进行头部固定。 |
MP8040 |
| 小鸟适配器 小鸟适配器采用45度耳杆及弯曲的喙夹持部分，并可以通过燕尾槽上下移动及进行水平移动。 |
MP8070 |
ZH-蓝星D型大动物脑立体定位仪
ZH-蓝星D型大动物脑立体定位仪
目前使用的脑立体定位仪可分为两大类：1、直线式（Rectilinear）或三平面式（Triplanar）。它是以三个假想的彼此相互垂直的三个平面，组成空间立体直角坐标。脑深部的某一微小结构，可以按这一坐标系统加以定位。在使用时，从电极移动架上的刻度，可读出电极尖端的三维坐标数值。2、赤道式（Equatorial）。它是由两个互成直角的圆弧梁构成，是按照立体坐标（Polar Coordinate）的原理制成，也可以规定其脑结构的空间位置，现多用于人用的定位器。本文着重介绍直线式的立体定位仪。立体定位的基本设计原则，不外下列各项，3、利用动物颅骨表面的某些解剖标志，如矢状缝，外耳道的中心轴，眶下缘中央部、前囱中心（Bregma），人字缝尖（Lamda）和上门齿根部等部位，同脑表面及深部某一结构（如核、前连合等）的相对恒定关系，借以从外部确定脑深部各结构位置。4、用立体空间直角坐标，以毫米为单位，描述脑深部结构所在的空间位置。5、用一坚固的金属主框，加上几种杆、夹、组成、且两侧对称的头夹，将动物的头按一定的几个部位作为固定点，固定牢固（不允许1/5毫米的移动）。6、用一组有三维立体滑动尺的、可读出1/10毫米的电极移动架（上下滑支尺的下端装有电极夹）来导向，可使电极地插入脑内某一指定结构。7、电极移动架与固定动物头的金属框，为两个部件，在用时能牢固地将电极移动架装在金属框上。 特点：1、有多种动物头夹（标配一种，如需另购），可用于多种实验动物。例如猪、狗、猫等一些较大动物，电极移动架的滑尺可移动范转较长。2、部件数目少，主框较粗，主要部件均由同一种金属构成，这样可使各部件的膨胀系数相同，避免接触电位。电极移动架与动物头固定夹装在主框上。3、电极移动架易于装卸。在动物头和进行手术操作时，可将电极移动架卸下，仪器成为可以独立使用的头固定器。这样可以电极移动架不易受损坏或碰歪。4、仪器上装多个对称的电极移动架，可以同时在两侧同名的脑结构中插放电极，或在同侧插多个电极。5、电极移动架的竖向滑尺，应可向前后和左右方向转动一定角度，以便在固定动物头部水平线中使用，或以一定角度向脑内插入电极。6、电极移动架上的电极固定夹，要求灵活而易卸，当做埋藏电极时使电极易于松下脱离。7、各滑尺的读数，应可较地读出1/10毫米。主要技术参数：1、重量：约30公斤2、道轨长：400mm3、道轨间距：可调4、精度：±0 .1mm5、 材质：合金材料6、 外型尺寸：950×450×500mm（一般尺寸需用户设计提供）7、 操作臂360度回转，摆动幅度180（±90°）8、 计数精度：±0.1mm9、 三维推进器精度：±0. 1mm10、 三维推进行程：80mm（X轴：80mm,Y轴80mm,Z轴80mm）11、 刻度激光雕刻
51600上海欣软stoelting脑立体定位仪
- 简介
- 特点
- 包括的组件
- 使用步骤
- 日常维护
- 实验过程
db006-1大鼠脑定位仪 数字式脑立体定位仪 数显式脑立体定位仪 小鼠脑定位仪
DB006-1型脑立体定位仪又称脑固定装置(stereotaxic apparatus),它是利用颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三度坐标系统,来确定皮层下某些神经结构的位置,以便在非直视暴露下对其进行定向的刺激、破坏、注射药物、引导电位等研究。动物脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备，用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作，可用于帕金森氏病动物模型建立，癫痫动物模型建立，脑内肿瘤模型建立，学习记忆，脑内神经干细胞移植，脑缺血等研究。
本仪器为国家专利产品，配有大鼠适配器一套，耳棒一对。DB006-1型脑立体定位仪也可在左右侧装配操作臂。
一、【技术特点】：
1、 刻度易读
a． 所有的刻度都起源于“U”形臂的开
放端，终止于内侧，这种方式与大多
数研究工作相适应，便于读数。
b． 标度数字非常清晰，与测量标尺配合精密，使读数分辩率精确至0.01mm
2、 移动平滑
三角形的导轨使之能够进行快速稳确定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极，锁定装置能够将电极以任何角度固定，不会滑脱。操作臂可以从支架上旋转360度，以便于实验动物的固定。
3、 双操作臂模式
该定位仪可在两侧同时装配操作臂，即ZH-蓝星C/三型脑立体定位仪。
4、 兼容性
DB006-1型脑立体定位仪可与国内外生产的微量注射泵、柔型颅钻、各种电极、适配器等配套使用。
5、适用动物
DB006-1型脑立体定位仪采用开放式架构，做不同的动物只需更换不能动物的适配器即可（标准配置适用于大鼠）。适用动物有小鼠、大鼠、豚鼠、鸟类、兔、猫、狗等动物。
三、【性能指标】：
1、读数精度：10微米
2、显示：LED显示屏（X、Y、Z三轴)
3、坐标任意位置调零
4、材质：合金材料
5、尺寸：350×250×340mm
6、操作臂360度回转，摆动幅度180度
7、计数精度：±0.01mm
8、三维推进器精度：±0.01mm
9、三维推进行程：80mm
10、可进行上下、左右、前后、旋转等精确定位
11、重量：5.5kg
12、附大鼠脑图谱1本
13、单操作臂模式
四、【使用单位】：
清华大学\首医大＼重庆医科大学\长春中医学院\浙江大学\徐州医学院\柳州医学院\牡丹江医学院/南京医科大学/解放军第三医学院等等
北京智鼠多宝生物科技有限责任公司
北京市大兴区黄村火神庙商业中心D座1112室
联系人：孟醒
手机：15313005355 电话：010——61210147
网址：www.zhishuduobao.com 邮箱：zhishuduobao@126.com
大鼠脑立体定位仪，小鼠脑立体定位仪
玉研仪器自主研发脑立体定位仪十四年，适用于大鼠、小鼠等实验动物，经典十字操作臂实现准确定位，精度可达10微米，特制螺纹精密螺杆，稳固不晃动实现对特定脑区的精确定位，是神经环路研究、神经系统性疾病、神经药理等领域内的重要研究设备，广泛面向全国各大科研院校,医院,高新企业,药企,医疗机构等科研单位。大鼠脑立体定位仪、小鼠脑立体定位仪（双臂脑立体定位仪，单臂脑立体定位仪，数显型脑立体定位仪）（根据需求不同，有多种不同的型号可供选择：单臂型，双臂型，数显型，数控型，敬请来电咨询）
轻便型：
标准型：
动物脑立体定位仪产品特点：操作灵活、简便，标配大鼠适配器；脑立体定位仪标尺是由激光雕刻，清晰易读：手动款式精确度为0.1mm，数字显示型号精度为0.01mm；脑立体定位仪操作臂移动范围（上下，左右，前后）：三方向移动距离80mm；垂直方向可90度转动，并随时锁定位置；扩充能力很强，可增加操作臂，增加注射装置及颅钻等；可以根据需要增加不同的固定器，用于多种动物；脑立体定位仪具有以下优势：
标尺易读数
移动平滑
电生理操作方便
配件多样，可选配各种动物适配器，麻醉罩以及颅钻
大鼠脑立体定位仪的主要构造：
数字显示型脑立体定位仪Digital Stereotaxic Instrument 是一种可靠的多功能的设备，通过仪器的准确定位，可以确保点击、微管以及其它设备在实验过程中的精确定位。数显型脑立体定位仪主要特点：1.适用于小鼠、新生大鼠、鸟类等动物的研究（请根据需求选择合适的配置）；2.无U型底座设计，操作空间最大化；3.读数精度采用游标卡尺方式，读数精度为10μm；4.操作臂上下、前后、左右移动范围可达80mm；垂直方向移动90°可锁住；5.配有鼻子适配器、三种不同型号的耳棒等；6.三角形的导轨使之能够进行快速定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极，锁定装置能够将电极以任何角度固定，不会滑脱。7.扩充能力很强，可增加操作臂、增加注射装置及颅钻等，也可以根据需要增加不同的固定器；8.目标定位的调零功能：在任意一个位点，每条轴方向上的显示都可以归零，这样就可以使操作简化，阅读方便。实际操作中，如果要定位一个特殊位点，可以先找到参考点，然后归零，再移动数显型脑立体定位仪操作臂到希望到达的点上，调低电极，夹持器或微管到位点上即可。
小鼠及幼大鼠脑立体定位仪适配器
该小鼠适配器耳杆采用树脂材料，对尖端进行适合的锥度处理，能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤，两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节，并带有刻度，适合不同的角度进行实验。
多种型号可供选择：
标准脑立体定位仪（小鼠）
双臂标准脑立体定位仪（小鼠）
数显标准脑立体定位仪（小鼠）
数显双臂标准脑立体定位仪（小鼠）
标准脑立体定位仪（大鼠）
双臂标准脑立体定位仪（大鼠）
数显标准脑立体定位仪（大鼠）
数显双臂标准脑立体定位仪（大鼠）
电动标准脑立体定位仪（大鼠）
定位仪基座
大鼠头部固定器
小鼠头部固定器
SA-100系列 标准型大鼠脑立体定位仪：
SA-100系列 标准型小鼠脑立体定位仪：
SA-150系列 数显型脑立体定位仪（大鼠）
单臂、数显标准脑立体定位仪（小鼠）
双臂、数显双臂标准脑立体定位仪（大鼠、小鼠）
脑立体定位仪相关配件及可选配件：
根据需要，还可以选择头部固定器：
大鼠脑部固定器适用于脑部固定的操作实验， 同时配合气体麻醉使用。非常适用于显微镜下对大鼠（小鼠有对应的型号）的手术操作和观察实验使用。我们还可以提供核磁共振兼容型号，供核磁环境中使用。
标准型大鼠头部固定器：
小鼠脑室显微观察固定器
型号：Y-AM-200
还可以加配跑轮，在小鼠运行状态下配合双光子显微镜对脑室进行成像和观察：
型号：Y-AM-210
小动物脑立体定位仪部分参考文献：1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.12. Hru?ka-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
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