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辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒
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详细内容
| 产品名称: | 辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒 | ||||||
| 产品编号: | XFAY1-1 | ||||||
| 检测方法: | 高效液相色谱法 | ||||||
| 产品规格: | 50管/48样 | ||||||
| 运输: | 快递送货上门 | ||||||
| 应用范围: | 科研用检测试剂 | ||||||
| 辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒 | |||||||
| 辅酶ⅠNAD(H)含量测定试剂盒说明书(50T) | |||||||
| 一、 测定意义: | |||||||
| NAD 是糖酵解和 TCA 循环的主要氢受体,生成的 NADH 经呼吸电子链传递把电子交 | |||||||
| 给氧,在合成 ATP 的同时,形成量的 ROS,同时 NADH 再生为 NAD。糖、脂、蛋白质 | |||||||
| 三代谢物质分解中的氧化反应绝部分通过这一体系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD | |||||||
| 比值的高低可用于评价糖酵解和 TCA 循环的强弱。较高的 NAD(H)及 NADH/NAD 比值说 | |||||||
| 明细胞呼吸耗氧量较高,处于过氧化状态,NADH/NAD 比值升高也可抑制糖酵解和 TCA | |||||||
| 循环。另外,NAD 降解产物具有非常重要的调控作用。 | |||||||
| 二、测定原理: | |||||||
| NAD 和 NADH 在 254 nm 下有吸收峰,利用高效液相色谱法在相应波长下测定其含量。 | |||||||
| 三、试验中需自备的仪器和试剂: | |||||||
| 高效液相色谱仪、低速离心机、溶剂抽滤装置、针头式过滤器(水系,50 个,0.22μm)、 | |||||||
| 滤膜(水系和有机系各 2 个,0.45μm)、C18柱(4.6 ×150 mm)、可调式移液器、样品瓶(50 | |||||||
| 个,2mL)、乙腈(120 mL)、甲醇(色谱级,300 mL)、蒸馏水 | |||||||
| 注:若用自动进样器,需要样品瓶,测定时将不少于 1mL 的样品或品加入样品瓶 | |||||||
| 中。无自动进样器,需手动进样时,不需要样品瓶,用进样针将不少于 20ul 的样品或 | |||||||
| 品打入进样阀。 | |||||||
| 辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒 | |||||||
| 四、试剂的组成和配制: | |||||||
| 试剂一:粉剂 1×1 瓶,粉剂 2×1 瓶,4℃保存;临用前用少量蒸馏水将粉剂 1 和粉剂 2 溶解 | |||||||
| 后倒入容量瓶中,用蒸馏水定容至 100mL,形成 NAD 和 NADH 提取液(注:试 | |||||||
| 剂瓶中的粉剂要冲洗干净),4℃保存 3 个月; | |||||||
| 试剂二:粉剂 1×1 瓶,粉剂 2×1 瓶,粉剂 3×1 瓶,4℃保存;临用前用少量蒸馏水将粉剂 | |||||||
| 1、粉剂 2 和粉剂 3 溶解后倒入容量瓶中,用蒸馏水定容至 1000mL,形成流动相缓 | |||||||
| 冲液基质(注:试剂瓶中的粉剂要冲洗干净), 4℃保存 3 个月。 | |||||||
| 试剂三:NAD 品 5mg×1 支,-20℃保存。加入 1mL 试剂一,配成 5mg/mL 溶液,现配 | |||||||
| 现用,用不完的试剂-20℃保存。 | |||||||
| 试剂四:NADH 品 5 mg×1 支,-20℃保存。加入 1mL 试剂一,配成 5mg/mL 溶液,现 | |||||||
| 配现用,用不完的试剂-20℃保存。五、实验前的准备工作: | |||||||
| 1. 将双蒸水 1000 mL、流动相缓冲液基质 1000 mL、甲醇 300 mL 和乙腈 120 mL 用 | |||||||
| 0.45 μm 的滤膜抽滤,以除去溶剂中的杂质,防止堵塞色谱柱。(注:双蒸水和缓 | |||||||
| 冲液基质用水系滤膜抽滤,乙腈用有机系滤膜抽滤)。 | |||||||
| 2. 流动相的配制:将抽滤完毕的流动相缓冲液基质 1000 mL 与乙腈配比为 9:1(v/v), | |||||||
| 即取 900mL 缓冲液基质与 100 mL 乙腈混合。[每个样品需要约 12mL 流动相,流 | |||||||
| 动相用量(mL)=12mL×样品数量+跑基线用量(约 50mL),流动相的用量请根 | |||||||
| 据样品数量用多少配多少]。 | |||||||
| 3. 将抽滤完毕的甲醇和双蒸水配比成 100%的甲醇, 10%的甲醇,双蒸水各 250 mL。 | |||||||
| 4. 将 2 和 3 中的溶剂超声 30 分钟,以脱去溶剂中的气泡,防止堵塞色谱柱。 | |||||||
| 六、辅酶ⅠNAD(H)的提取: | |||||||
| 组织的处理:准确称取组织重量,按重量体积比(g/mL)加 9 倍试剂一,提取 NAD 和 | |||||||
| NADH,制成 10%匀浆。20000 g/min 离心 30 min,取上清液用 0.22μm 水系针头式过滤器过 | |||||||
| 滤后待测,同时测定组织蛋白含量。 | |||||||
| 细胞处理:收集于 60 mL 细胞,离心菌体经高压冷冻干燥 12 h 后,加入 2 mL 试剂一。 | |||||||
| 超声破壁细胞(950 W,30%,15 min,工作 1 s,间隔 2 s),再经 10,000r 4℃高速离心 40 s, | |||||||
| 上清用 0.22μm 水系微孔滤膜过滤后直接上柱检测。 | |||||||
| 辅酶ⅠNAD(H)含量试剂盒 | |||||||
| 七、辅酶ⅠNAD(H)含量测定操作步骤: | |||||||
| 1. 开启电脑、检测器和泵,安装上色谱柱,打开 empower 软件,在方法组中设置进样 | |||||||
| 量 20 μL,流速 0.8 mL/min,保留时间 15min,检测波长 254nm,设置完毕保存方法 | |||||||
| 组。 | |||||||
| 2. 用 100%的甲醇、10%的甲醇、双蒸水按甲醇浓度从到小的顺序洗色谱柱 30min。 | |||||||
| 3. 用流动相洗柱子,待基线稳定后开始加样。 | |||||||
| 4. 加入品 20 μL,在 15min 内可分离 NAD 和 NADH, NAD 的保留时间在 3min | |||||||
| 左右,NADH 的保留时间在 7min 左右(柱子不同,保留时间有差异),计算不同浓 | |||||||
| 度的 NAD 和 NADH 品的峰面积。 | |||||||
| 5. 加入样品 20 μL,在相应保留时间处检测 NAD 和 NADH 的峰面积。八、辅酶ⅠNAD(H)含量的计算: | |||||||
| 1. NAD 含量的计算 | |||||||
| NAD 曲线的绘制: | |||||||
| 将 5mg/ml 的 NAD 品用双蒸水分别稀释成 110 μg/ml、80 μg/ml、50 μg /ml、和 20 μg | |||||||
| /ml 的 NAD 品溶液,计算不同品溶液的峰面积。 | |||||||
| 计算曲线公式为: y = 25069χ- 26754(χ 为 NAD 浓度,μ g/ml;y 为峰面积) | |||||||
| 推出:χ=(y + 26754)÷25069(χ 为 NAD 浓度,μ g/ml;y 为峰面积) | |||||||
| NAD 含量(μg/mg prot)=(样品峰面积+26754)÷25069÷Cprot | |||||||
| Cprot 为待测样本蛋白浓度 | |||||||
| 2. NADH含量的计算 | |||||||
| NADH 曲线的绘制: | |||||||
| 将 5mg/ml 的 NADH 品用双蒸水分别稀释成 200 μg/ml、150 μg/ml、100 μg/ml 和 | |||||||
| 50 μg/ml 的 NADH 品溶液,计算不同品溶液的峰面积。 | |||||||
| 计算曲线公式为: y = 13275χ+35717(χ 为 NADH 浓度,μ g/ml;y 为峰面积) | |||||||
| 推出:χ=(y – 35717)÷13275(χ 为 NADH 浓度,μ g/ml;y 为峰面积) | |||||||
| NADH 含量(μg/mg prot)=(样品峰面积 - 35717)÷13275÷Cprot | |||||||
| Cprot 为待测样本蛋白浓度 | |||||||
| 注:品的稀释倍数要根据样品中 NAD 和 NADH 浓度确定,样品中 NAD 和 NADH 的 | |||||||
| 峰面积必须落在不同浓度的 NAD 和 NADH 品的峰面积之内,该曲线紧供参考。 | |||||||
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