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资料下载

鸡病毒性肠炎病毒(DEV)酶联免疫分析

点击次数： 407发布时间：2012/3/6 9:49:19

  • 上 传 者： 上海恒远生物技术发展有限公司
  • 上传时间： 2012/3/6 9:49:19
  • 文件大小： 106KB
  • 文件类型： doc
  • 所属分类： 其它资料
  • 下载次数： 84次
  • 查看次数： 407

资料简介：

                                       鸡病毒性肠炎病毒（DEV）酶联免疫分析试剂盒使用

说明书
本试剂盒仅供研究使用。
                                                                     48T
 
使用目的：
本试剂盒用于测定鸡血清、血浆及相关液体样本中鸡病毒性肠炎病毒（DEV）表达。
实验原理
本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中鸡病毒性肠炎病毒（DEV）表达。用纯化的鸡病毒性肠炎病毒（DEV）抗体包被微孔板，制成固相体，可与样品中病毒性肠炎病毒（DEV）相结合，经洗涤除去未结合的抗原和其他成分后再与HRP标记的鸡病毒性肠炎病毒（DEV）抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），与CUTOFF值相比较，从而判定标本中鸡病毒性肠炎病毒（DEV）的存在与否。
试剂盒组成

1
20倍浓缩洗涤液
20ml×1瓶
7
终止液
3ml×1瓶
2
酶标试剂
3ml×1瓶
8
阳性对照
0.5ml×1瓶
3
酶标包被板
12孔×4条
9
阴性对照
0.5ml×1瓶
4
样品稀释液
3ml×1瓶
10
说明书
1份
5
显色剂A液
3ml×1瓶
11
封板膜
2张 
6
显色剂B液
3ml×1/瓶
12
密封袋
1个

标本要求
1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融
2．不能检测含NaN3的样品，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。
1.         编号：将样品对应微孔按序编号，每板应设阴性对照2孔、阳性对照2孔、空白对照1孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）
2.         加样：分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照50μl。然后在待测样品孔先加样品稀释液40μl，然后再加待测样品10μl。加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，
3.         温育：用封板膜封板后置37℃温育30分钟。  
4.         配液：将20倍浓缩洗涤液用蒸馏水20倍稀释后备用
5.         洗涤：小心揭掉封板膜，弃去液体，甩干，每孔加满洗涤液，静置30秒后弃去，如此重复5次，拍干。
6.         加酶：每孔加入酶标试剂50μl，空白孔除外。
7.         温育：操作同3。
8.         洗涤：操作同5。
9.         显色：每孔先加入显色剂A50μl，再加入显色剂B50μl，轻轻震荡混匀，37℃避光显色15分钟.
10.     终止：每孔加终止液50μl，终止反应（此时蓝色立转黄色）。
11.     测定：以空白空调零，450nm波长依序测量各孔的吸光度（OD值）。 测定应在加终止液后15分钟以内进行。
操作程序总结：
 
计算和结果判定：
  试验有效性：阳性对照孔平均值≥1.00; 阴性对照平均值≤0.10
 临界值（CUT OFF）计算：临界值=阴性对照孔平均值+0.15
 阴性判定：样品OD值< 临界值（CUT OFF）者为鸡病毒性肠炎病毒（DEV）阴性
 阳性判定：样品OD值≥ 临界值（CUT OFF）者为鸡病毒性肠炎病毒（DEV）阳性
。
注意事项
1．操作严格按照说明书进行，本试剂不同批号组分不得混用。
2．试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未用完，板条应装入密封袋中保存。
3．浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。
4． 封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
5．底物请避光保存。
6．试验结果判定必须以酶标仪读数为准，使用双波长检测时，参考波长为630nm
7．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为2M的硫酸，使用时必须注意安全。
保存条件及有效期
1．试剂盒保存：；2-8℃。
2．有效期：6个月

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