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鸡胚成纤维细胞
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品牌名称：$brandModel.Title型号： 原产地：中国大陆 更新时间：2026/10/9 10:32:19
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详细内容
鸡胚成纤维细胞
产品简介：
产品名称 ： 鸡胚成纤维细胞
产品品牌 ： 生物
组织来源 ： 胚胎组织
产品规格 ： 5×105cells/T 25细胞培养瓶
细胞简介：
鸡胚成纤维细胞分离自胚胎；成纤维细胞（Fibroblast）是疏松结缔组织的主要细胞成分，由胚胎时期的间充质细胞分化而来。成纤维细胞较大，轮廓清楚，多为突起的纺锤形或星形的扁平状结构，其细胞核呈规则的卵圆形，核仁大而明显。
成纤维细胞功能活动旺盛，细胞质嗜弱碱性，具明显的蛋白质合成和分泌活动，在一定条件下，它可以实现跟纤维细胞的互相转化；成纤维细胞对不同程度的细胞变性、坏死和组织缺损的修复有着十分重要的作用。
刚分离的胚胎成纤维细胞呈圆形、折光性良好，悬浮于培养基中。30min细胞贴壁，其中部分开始伸出伪足，表现为小的突起；6h后细胞基本贴壁完全，伸展成梭形，胞核清晰，分布较均匀，散在生长，不聚集成团；细胞生长迅速，5⁻⁷天即呈融合状态，细胞排列紧密，有的交叉重叠生长，平坦、胞体较大，细胞质透明，细胞核较大，呈椭圆形，颜色淡。细胞融合，并彼此连接成网状；细胞呈突起的纺锤形或星形的扁平分布。
细胞呈突起的纺锤形或星形的扁平分布。该细胞常用作ES细胞培养常用的饲养层细胞，能产生抑制ES细胞自主分化和促进ES细胞增殖的因子，故能有效地促进ES细胞的增殖并维持其未分化特性和多潜能性，且分泌效果优于外源添加的一些因子，而且可以为ES细胞的培养提供类似于体内的微环境，故在研究哺乳动物ES细胞中得到广泛使用。
方法简介：
生物实验室分离的鸡胚成纤维细胞采用胰蛋白酶消化法结合差速贴壁法制备而来，细胞总量约为5×105cells/瓶。
质量检测：
生物实验室分离的鸡胚成纤维细胞经Vim entin免疫荧光鉴定，纯度可达90% 以上，且不含有H IV -1、H BV 、H C V 、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养信息：
培 养 基 ： 含FBS、bFG F、Insulin、Penicillin、Streptom ycin等
换液频率 ： 每2-3天换液一次
生长特性 ： 贴壁
细胞形态 ： 成纤维细胞样
传代特性 ： 可传5代左右。3代以内状态佳
传代比例 ： 1:2
消 化 液 ： 0. 25% 胰蛋白酶
培养条件 ： 气相：空气，95% 。C O2，5%
鸡胚成纤维细胞体外培养周期有限。建议使用生物配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的佳培养状态。
细胞培养状态：
发货时发送细胞电子版照片
使用方法：
鸡胚成纤维细胞是一种贴壁细胞，细胞形态呈成纤维细胞样，在生物技术部标准操作流程下，细胞可传5代左右；3代以内状态佳；建议您收到细胞后尽快进行相关实验。
客户收到细胞后，请按照以下方法进行操作：
1.取出T 25细胞培养瓶，用75% 酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置3-4h，以稳定细胞状态。
2.贴壁细胞消化
1）吸出T25细胞培养瓶中的培养基，用PBS清洗细胞一次。
2）添加0.25% 胰蛋白酶消化液1m L至T 25培养瓶中，轻微转动培养瓶至消化液覆盖整个培养瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃温浴1-3min；倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后，再加入5xy完全培养基终止消化。
3）用吸管轻轻吹打混匀，按传代比例接种T25培养瓶传代，然后补充新鲜的完全培养基至5m L，置于37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置培养。
4）待细胞完全贴壁后，培养观察；之后按照换液频率更换新鲜的完全培养基。
5）细胞实验
因原代细胞贴壁特殊性，贴壁的原代细胞在消化后转移至其他实验器皿（如玻璃爬片、培养板、共聚焦培养皿等）时，需要对实验器皿进行包被，以增强细胞贴壁性，避免细胞因没贴好影响实验；包被条件常选用鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm2） ，多聚赖氨酸PLL（0.1m g/m l），明胶（0.1% ），依据细胞种类而定。悬浮/半悬浮细胞无需包被。
注意事项：
1. 培养基于4℃条件下可保存3-6个月。
2. 在细胞培养过程中，请注意保持无菌操作。
3. 传代培养过程中，胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞贴壁及其生长状态。
4. 建议客户收到细胞后前3天每个倍数各拍几张细胞照片，记录细胞状态，便于和生物技术部沟通。由于运输的原因，个别敏感细胞会出现不稳定的情况，请及时和我们联系，详尽告知细胞的具体情况，以便我们的技术人员跟踪、回访直至问题得到解决。
| 原代细胞培养问 题 | |
| 组织块直接培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 将组织块转移至培养瓶，并贴附于瓶底面。 | |
| 4. 轻轻将培养瓶翻转，瓶底朝上，向瓶内注入适量的培养液，将培养瓶放置在 37℃恒温箱内培养。 | |
| 5. 放置待组织小块贴附后，将培养瓶慢慢翻转平放，使组织浸入培养液中 37℃继续培养。 | |
| 消化培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 视组织块量加入酶液， 37℃中消化20—40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。 | |
| 4. 加入 3—5xy培养液以终止酶消化作用（或加入相关酶抑制剂）。 | |
| 5. 静置 5—10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。 | |
| 6. 1000rpm，离心10分钟，弃上清液。 | |
| 7. 加入 Hank＇s液5xy，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。 | |
| 8. 加入培养液 1—2xy（视细胞量），血球计数板计数。 | |
| 9. 将细胞转移到培养瓶中， 37℃下培养。 | |
| 器官培养法 | 1. 将不锈网做成支架形状，调整其高度至培养皿的 1/2深度平面，在其表面放置0.5μm孔径滤膜。 |
| 2. 将培养液加入培养皿中，使液面刚刚接触到滤膜，但不要使其浮起。 | |
| 3. 将要培养器官组织放在滤膜上，一般厚度不要超过 200μm，水平面积不超过10mm2。 | |
| 4. 将上述准备好的培养物放入 CO2培养箱，并加注氧气调整氧分压，建议到90%。 | |
| 5. 培养过程中要注意观察培养液平面，尽可能保持在与滤膜一致的水平上。 | |
| 6. 上述可进行器官培养 1-3周，每2-3天换液一次，并根据情况做进一步实验和检测。 | |
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