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鸡外周血淋巴细胞
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品牌名称：$brandModel.Title型号： 原产地：中国大陆 更新时间：2026/10/9 10:32:19
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详细内容
鸡外周血淋巴细胞
产品简介 ：
产品名称 ： 鸡外周血淋巴细胞
产品品牌 ： 生物
组织来源 ： 外周血
产品规格 ： 5×105cells/T 25细胞培养瓶
细胞简介 ：
鸡外周血淋巴细胞分离自外周血；所谓的外周血，即除骨髓之外的血液，就是已经被造血器官释放入循环系统参与循环的血，它区别于造血器官内的未成熟的血细胞或未被释放入循环的血细胞。外周血淋巴细胞（Peripheral Blood Lymphocyte）简称PBL，主要是血液循环中的淋巴细胞，由T细胞和B细胞组成，其中T细胞（占70%～80%）和B细胞（占20%～30%）。
方法简介：
生物实验室分离的鸡外周血淋巴细胞采用取外周血、通过密度梯度离心法制备而来，细胞总量约为1×10⁶cells/瓶。
质量检测：
生物实验室分离的鸡外周血淋巴细胞经过检测，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养信息：
培 养 基 ： 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等
换液频率 ： 每2-3天换液一次
生长特性 ： 悬浮
细胞形态 ： 圆形
传代特性 ： 不增殖；不传代
消 化 液 ： 0. 25% 胰蛋白酶
培养条件 ： 气相 ： 空气，95% 。C O2，5%鸡外周血淋巴细胞体外培养周期有限。建议使用生物配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的佳培养状态。
细胞培养状态：
发货时发送细胞电子版照片
使用方法：
鸡外周血淋巴细胞是一种悬浮细胞，细胞形态呈圆形，在生物技术部标准操作流程下，细胞不增殖；不传代；建议您收到细胞后尽快进行相关实验。
客户收到细胞后，请按照以下方法进行操作：
1 .取出T 25细胞培养瓶，用75% 酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置3-4h，以稳定细胞状态。
2.贴壁细胞消化
1）吸出T25细胞培养瓶中的培养基，用PBS清洗细胞一次。
2）添加0.25% 胰蛋白酶消化液1m L至T 25培养瓶中，轻微转动培养瓶至消化液覆盖整个培养瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃温浴1-3min；倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后，再加入5xy完全培养基终止消化。
3）用吸管轻轻吹打混匀，按传代比例接种T25培养瓶传代，然后补充新鲜的完全培养基至5m L，置于37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置培养。
4）待细胞完全贴壁后，培养观察；之后按照换液频率更换新鲜的完全培养基。
3.细胞实验
因原代细胞贴壁特殊性，贴壁的原代细胞在消化后转移至其他实验器皿（如玻璃爬片、培养板、共聚焦培养皿等）时，需要对实验器皿进行包被，以增强细胞贴壁性，避免细胞因没贴好影响实验；包被条件常选用鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm2） ，多聚赖氨酸PLL（0.1m g/m l），明胶（0.1% ），依据细胞种类而定。悬浮/半悬浮细胞无需包被。
注意事项：
1. 培养基于4℃条件下可保存3-6个月。
2. 在细胞培养过程中，请注意保持无菌操作。
3. 传代培养过程中，胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞贴壁及其生长状态。
4. 建议客户收到细胞后前3天每个倍数各拍几张细胞照片，记录细胞状态，便于和生物技术部沟通。由于运输的原因，个别敏感细胞会出现不稳定的情况，请及时和我们联系，详尽告知细胞的具体情况，以便我们的技术人员跟踪、回访直至问题得到解决。
| 原代细胞培养问 题 | |
| 组织块直接培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 将组织块转移至培养瓶，并贴附于瓶底面。 | |
| 4. 轻轻将培养瓶翻转，瓶底朝上，向瓶内注入适量的培养液，将培养瓶放置在 37℃恒温箱内培养。 | |
| 5. 放置待组织小块贴附后，将培养瓶慢慢翻转平放，使组织浸入培养液中 37℃继续培养。 | |
| 消化培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 视组织块量加入酶液， 37℃中消化20—40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。 | |
| 4. 加入 3—5xy培养液以终止酶消化作用（或加入相关酶抑制剂）。 | |
| 5. 静置 5—10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。 | |
| 6. 1000rpm，离心10分钟，弃上清液。 | |
| 7. 加入 Hank＇s液5xy，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。 | |
| 8. 加入培养液 1—2xy（视细胞量），血球计数板计数。 | |
| 9. 将细胞转移到培养瓶中， 37℃下培养。 | |
| 器官培养法 | 1. 将不锈网做成支架形状，调整其高度至培养皿的 1/2深度平面，在其表面放置0.5μm孔径滤膜。 |
| 2. 将培养液加入培养皿中，使液面刚刚接触到滤膜，但不要使其浮起。 | |
| 3. 将要培养器官组织放在滤膜上，一般厚度不要超过 200μm，水平面积不超过10mm2。 | |
| 4. 将上述准备好的培养物放入 CO2培养箱，并加注氧气调整氧分压，建议到90%。 | |
| 5. 培养过程中要注意观察培养液平面，尽可能保持在与滤膜一致的水平上。 | |
| 6. 上述可进行器官培养 1-3周，每2-3天换液一次，并根据情况做进一步实验和检测。 | |
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