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鸡小肠黏膜上皮细胞
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品牌名称：$brandModel.Title型号： 原产地：中国大陆 更新时间：2026/10/9 10:32:19
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详细内容
鸡小肠黏膜上皮细胞
产品简介：
产品名称 ： 鸡小肠黏膜上皮细胞
产品品牌 ： 生物
组织来源 ： 小肠组织
产品规格 ： 5×105cells/T 25细胞培养瓶
细胞简介：
鸡小肠黏膜上皮细胞分离自小肠组织；小肠位于腹中，上端接幽门与胃相通，下端通过阑门与大肠相连，是食物消化吸收的主要场所。小肠盘曲于腹腔内，上连胃幽门，下接盲肠，分为十二指肠、空肠和回肠三部分。
小肠内消化是至关重要的，因为食物经过小肠内胰液、胆汁和小肠液的化学性消化及小肠运动的机械性消化后，基本上完成了消化过程，同时营养物质被小肠黏膜吸收了。小肠管壁由黏膜、黏膜下层、肌层和浆膜构成。
其结构特点是管壁有环形皱襞，黏膜有许多绒毛，绒毛根部的上皮下陷至固有层，形成管状的肠腺，其开口位于绒毛根部之间。绒毛和肠腺与小肠的消化和吸收功能关系密切；构成肠腺的细胞有柱状细胞、杯状细胞、潘氏细胞和未分化细胞。
柱状细胞和内分泌细胞与绒毛上皮相似，接近绒毛的柱状细胞与吸收细胞相似，绒毛深部的柱状细胞微绒毛少而短，不形成纹状缘。小肠有三种功能即消化、吸收和分泌及运动功能，其中以吸收和分泌功能为主。平滑肌细胞的收缩是负责肠蠕动的动力，促使食物向下运动。肠黏膜上皮细胞是机体内外环境的重要屏障，持续暴露于大量抗原中，也是机体面对病原微生物的第一道防线。
因此，肠黏膜上皮细胞除有吸收、分泌和转运等重要生理功能之外，在黏膜先天性和获得性免疫防御机制中也起着重要作用。肠黏膜上皮细胞作为首先接触抗原的细胞，在黏膜免疫反应的起始阶段发挥关键作用，它决定黏膜免疫反应的发生、性质和强度。
方法简介：
生物实验室分离的鸡小肠黏膜上皮细胞采用中性蛋白酶-胶原酶混合消化法结合差速贴壁法，并通过上皮细胞专用培养基培养筛选制备而来，细胞总量约为5×105cells/瓶 。
质量检测：
生物实验室分离的鸡小肠黏膜上皮细胞经经C ytokeratin-18免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有H IV -1、H BV 、H C V 、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养信息：
包被条件 ： 鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm 2）
培 养 基 ： 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptom ycin等
换液频率 ： 每2-3天换液一次
生长特性 ： 贴壁
细胞形态 ： 上皮细胞样
传代特性 ： 可传1代
传代比例 ： 1:2
消 化 液 ： 0. 25% 胰蛋白酶
培养条件 ： 气相 ： 空气，95% 。C O2，5%鸡小肠黏膜上皮细胞体外培养周期有限。建议使用生物配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的佳培养状态。
细胞培养状态：
发货时发送细胞电子版照片
使用方法：
鸡小肠黏膜上皮细胞是一种贴壁细胞，细胞形态呈上皮细胞样，在生物技术部标准操作流程下，细胞可传1代；建议您收到细胞后尽快进行相关实验。
客户收到细胞后，请按照以下方法进行操作：
1 .取出T 25细胞培养瓶，用75% 酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置3-4h，以稳定细胞状态。
2.贴壁细胞消化
1）吸出T25细胞培养瓶中的培养基，用PBS清洗细胞一次。
2）添加0.25% 胰蛋白酶消化液1m L至T 25培养瓶中，轻微转动培养瓶至消化液覆盖整个培养瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃温浴1-3min；倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后，再加入5xy完全培养基终止消化。
3）用吸管轻轻吹打混匀，按传代比例接种T25培养瓶传代，然后补充新鲜的完全培养基至5m L，置于37℃、5% C O 2、饱和湿度的细胞培养箱中静置培养。
4）待细胞完全贴壁后，培养观察；之后按照换液频率更换新鲜的完全培养基。
3.细胞实验
因原代细胞贴壁特殊性，贴壁的原代细胞在消化后转移至其他实验器皿（如玻璃爬片、培养板、共聚焦培养皿等）时，需要对实验器皿进行包被，以增强细胞贴壁性，避免细胞因没贴好影响实验；包被条件常选用鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm2） ，多聚赖氨酸PLL（0.1m g/m l），明胶（0.1% ），依据细胞种类而定。悬浮/半悬浮细胞无需包被。
注意事项：
1. 培养基于4℃条件下可保存3-6个月。
2. 在细胞培养过程中，请注意保持无菌操作。
3. 传代培养过程中，胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞贴壁及其生长状态。
4. 建议客户收到细胞后前3天每个倍数各拍几张细胞照片，记录细胞状态，便于和生物技术部沟通。由于运输的原因，个别敏感细胞会出现不稳定的情况，请及时和我们联系，详尽告知细胞的具体情况，以便我们的技术人员跟踪、回访直至问题得到解决。
| 原代细胞培养问 题 | |
| 组织块直接培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 将组织块转移至培养瓶，并贴附于瓶底面。 | |
| 4. 轻轻将培养瓶翻转，瓶底朝上，向瓶内注入适量的培养液，将培养瓶放置在 37℃恒温箱内培养。 | |
| 5. 放置待组织小块贴附后，将培养瓶慢慢翻转平放，使组织浸入培养液中 37℃继续培养。 | |
| 消化培养法 | 1. 取材，用 Hank＇s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。 |
| 2. 用手术剪将组织剪切成 1mm3左右的小块，再用Hank＇s液洗三次。 | |
| 3. 视组织块量加入酶液， 37℃中消化20—40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。 | |
| 4. 加入 3—5xy培养液以终止酶消化作用（或加入相关酶抑制剂）。 | |
| 5. 静置 5—10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。 | |
| 6. 1000rpm，离心10分钟，弃上清液。 | |
| 7. 加入 Hank＇s液5xy，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。 | |
| 8. 加入培养液 1—2xy（视细胞量），血球计数板计数。 | |
| 9. 将细胞转移到培养瓶中， 37℃下培养。 | |
| 器官培养法 | 1. 将不锈网做成支架形状，调整其高度至培养皿的 1/2深度平面，在其表面放置0.5μm孔径滤膜。 |
| 2. 将培养液加入培养皿中，使液面刚刚接触到滤膜，但不要使其浮起。 | |
| 3. 将要培养器官组织放在滤膜上，一般厚度不要超过 200μm，水平面积不超过10mm2。 | |
| 4. 将上述准备好的培养物放入 CO2培养箱，并加注氧气调整氧分压，建议到90%。 | |
| 5. 培养过程中要注意观察培养液平面，尽可能保持在与滤膜一致的水平上。 | |
| 6. 上述可进行器官培养 1-3周，每2-3天换液一次，并根据情况做进一步实验和检测。 | |
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