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技术文章
做动脉粥样硬化研究的人 终于不用自己凑试剂了 | 富衡生物
点击次数：450 发布时间：2026/8/17 13:22:28
做泡沫细胞模型这件事，说难不难，说简单——真不简单。
每个做动脉粥样硬化方向的人，都经历过这样的场景：
RAW264.7细胞铺好了，等贴壁、换液、加ox-LDL……48小时后满怀期待地染油红O，结果显微镜下一看——脂滴稀稀拉拉，颜色深浅不一，对照组背景还偏高。
到底是细胞状态不好？ox-LDL活性下降了？还是染色条件没摸对？
排查一圈下来，三天时间没了。
⚠ 问题出在哪？出在你一直在"攒"模型。
细胞用一家的，ox-LDL用另一家的，染色液又是第三个供应商。每一批试剂的活性、每一个环节的变量都在叠加，模型重复性差，不是你的技术问题——是物料的问题。
做模型应该像做ELISA一样，有标准方案。
这也是我们开发RAW264.7泡沫化细胞模型构建试剂盒（WWL-Y040）的初衷——把造模需要的三样核心物料配齐，让你开箱就能用，不用再去分别凑试剂。
RAW264.7泡沫化细胞模型构建试剂盒（WWL-Y040）
📦 试剂盒包含什么？
三件套，细胞+诱导剂+染色，一步到位。
📝 操作流程也很简单，总共就三步：
铺板 → 诱导 → 染色
1铺板
细胞复苏后按1×105cells/mL铺12孔板，每孔1mL，37℃、5% CO₂培养24小时等贴壁。
2诱导
吸去旧培养基，换成含ox-LDL的无血清DMEM，继续培养48小时。这一步是关键——ox-LDL被巨噬细胞通过清道夫受体大量摄取，胆固醇在胞内堆积，形成典型的泡沫样形态。
3染色
吸去培养基，PBS洗涤1次。按油红O母液:去离子水=3:2配制工作液，加入孔板室温染色15-30分钟。
吸去染色液，60%异丙醇快速分化10-15秒。PBS洗涤2-3次去除背景浮色，显微镜下观察并拍照。
📊 效果怎么样？我们用数据说话。
实测结果：
对照组阳性率
0.16%/ 0.23%
200× / 400×，远低于1%的质控线
诱导组阳性率
30.59%/ 24.08%
200× / 400×
诱导倍数
∼ 140×
诱导48小时后，细胞内脂滴量是对照组的140倍
也就是说，诱导48小时后，细胞内脂滴量是对照组的140倍。红色脂滴在显微镜下清晰可见，拍照发文章完全没问题。
🎯 这个试剂盒适合谁？
●做动脉粥样硬化机制研究的课题组
●筛选抗AS药物时需要标准化泡沫细胞模型
●脂代谢通路研究、泡沫细胞形成调控方向
●需要稳定、可重复的造模方案用于论文发表
🤔 为什么选试剂盒而不是自己凑？
说句实在话——时间成本。你自己配一遍，光摸索ox-LDL工作浓度、染色时间、分化条件，少说也要跑两三批预实验。试剂盒已经把条件摸好了，你照着protocol做就行。
而且ox-LDL干粉比预配好的溶液更稳定，批间差更小。我们用的配方是经过验证的，你拿到手就是条件。
产品编号
WWL-Y040
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