淋巴细胞分离液的主要成分通常包括泛影酸钠、聚蔗糖(如Ficoll)等高分子聚合物，以及注射用水等。这些成分混合后形成一种密度介于1.075~1.090之间的近似等渗溶液。其分离原理基于细胞密度差异，利用离心产生的重力加速度，使不同密度的细胞在密度梯度中得以分离。
淋巴细胞分离液使用方法：
试剂准备：根据实验需求准备适量的淋巴细胞分离液和抗凝处理的血液样本。同时，可能需要准备盐缓冲液等辅助试剂。
混合样本：将抗凝处理的血液样本与适量的淋巴细胞分离液混合，注意轻轻加入以避免剧烈搅拌导致细胞破坏。
密度梯度离心：将混合液置于离心管中，进行密度梯度离心。离心时间通常为20~40分钟，离心速度根据实验要求而定。
收集细胞：离心后，淋巴细胞会聚集在密度梯度的某一特定层。轻轻移除上层分离液和下层沉淀物后，即可收集到淋巴细胞层。
细胞洗涤：为了去除可能残留的血小板和其他杂质，通常需要对收集到的淋巴细胞进行洗涤。
淋巴细胞分离液是临床上比较常用的一种试剂，一般在检验科，血液内科等科室用的比较多。临床上淋巴细胞分离液主要是用来分离单核细胞和淋巴细胞的混合物，也就是单个核细胞。
因为混合物中单核细胞占的数目比较少，所以称为淋巴细胞分离液。淋巴细胞分离液的使用方法是将其加入装有血液的抗凝管中，然后进行离心，大概20~30分钟左右，然后就可以看到液体分层。
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