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分析丙烯酰胺的实验方法

点击次数:3050 发布时间:2020/5/25 20:23:03

化学试剂:丙烯酰胺Acrylamide,C3H5NO,CAS: 79-06-1 建议的内标:D3-丙烯酰胺

色谱流动相的制备:流动相A:在1 L HPLC级的水中,加入10 µL甲酸。 流动相B:在1 L HPLC级的甲醇中,加入10 µL甲酸。

样品制备试剂 :Carrez ReagentⅠ (三水合亚铁氰化钾) K4Fe(CN)6 • 3H2O。 Carrez ReagentⅡ (七水合硫酸锌) ZnSO4 • 7H2O。

洗脱液的制备: Carrez 试剂Ⅰ:溶解37.5 g K4Fe(CN)6•3H2O于250 mL HPLC级的水中。 Carrez 试剂Ⅱ:溶解 75 g ZnSO4 • 7H2O于250 mL HPLC级的水中。

样品制备 :基于Buhlert和Hartig等人提出的方法[1,2]: 1. 称量5 mL匀浆的样品; 2. 加入50 mL环己烷 / 丁基甲基醚 ( 95 / 5 ) 混合溶液进行脱脂; 3. 空气干燥; 4. 加入500 µL内标D3-丙稀酰胺溶液 ( 10 µg/mL, 溶解于 HPLC级的水中),得到内标浓度约为10 ng/mL的溶液; 5. 加入95 mL HPLC级的水,40 ℃超声提取10 min (溶液中加入剪成碎片的过滤纸); 6. 加入2.5 mL Carrez 试剂Ⅰ和2.5 mL Carrez 试剂Ⅱ,进行蛋白质沉淀; 7. 过滤并离心; 8. 如果需要沉淀完全,将溶液冷却至 -18 ℃,然后迅速暖至室温,离心; 9. 用水稀释上清液(稀释比例1 / 4 , V/V)。

基于Tareke等人提出的方法[3]: 1. 称量10 g匀浆的样品; 2. 加入100 mL水,和100 µL内标 D3-丙稀酰胺 (10 µg/mL,溶解于HPLC级的水中); 3. 于12 mL Pyrex 玻璃离心管中进行离心; 4. 14000 r/min离心10 min,上清液移入两支Eppendorf管中; 5. 用乙腈活化固相提取柱,然后用水清洗(2×2 mL) (多模式分离,300 mg,International Sorbent Technology 有限公司); 6. 弃去开始的1 mL滤液; 7. 其他的洗脱液,用0.45 µm 滤膜进行过滤; 8. 用 500 µL超滤器 (Microcon YM-3, Millipore),14000 r/min 离心10 min进行超滤,接收200 µL滤液。

基于Jürgen Buhlert (CVUA Sigmaringen, 德国) 提出的方法(牛奶基质): 1. 用5倍的水稀释样品 (V/V); 2. 加入内标D3-丙稀酰胺 ; 3. 用Carrez试剂Ⅰ和Ⅱ进行蛋白质沉淀; 4. 过滤; 5. 在LC-MS/MS进样前,每1 mL上清液中加入4 µL 甲酸。

色谱分离条件 Agilent 1100 系统:G1312A二元泵系统、G1367A型自动进样器、柱温箱。 色谱柱[2]:1. Phenomenex Luna,3 µm,C18,150 mm×3 mm,基质较简单时推荐使用; 2. Thermo Electron Hypercarb,5 µm,100 mm×3 mm,基质较简单时推荐使用 (例如可可饮料,全麦面包等) 。 流动相:A相—水 + 0.1% 甲酸;B相—甲醇 + 0.1%甲酸。

MS/MS 检测 API 3200™或3200 QTRAP® LC-MS/MS液质分析系统。TurboIonSpray 离子源、正离子方式、MRM扫描 方式。

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