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第9年

当前位置:阿仪网>上海雅吉生物科技有限公司>技术文章>Tris聚丙烯酰胺电泳预制凝胶

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技术文章

Tris聚丙烯酰胺电泳预制凝胶

点击次数:3346 发布时间:2023/5/29 11:19:19

产品信息:

本产品为Bis-Tris聚丙烯酰胺电泳预制凝胶,可用于蛋白质分离实验,单片胶为15孔,每孔大上样量为25 μl,推荐上样量10-15 μl。独特的凝胶缓冲配方使蛋白电泳条带更为清晰,锐利,均匀,分辨率更高;配套的MOPS Running Buffer为中性缓冲液,可以提高凝胶稳定性,并避免蛋白在电泳过程中的再修饰。(注:电泳推荐使用配套赠送的MOPS running buffer,对于小分子量蛋白,也可使用MES缓冲液。请勿使用Tris-Glycine Running Buffer代替,电泳缓冲液反复使用次数建议不超过3次)


预制胶选择指南:

在蛋白实验中,通常使用固定浓度胶和梯度胶两种,与固定浓度胶相比,显然梯度胶具有更大优势。先,梯度胶的分离范围更宽,可以同时分离较大范围分子量的蛋白质。梯度胶的顶部孔径较大,底部孔径较小,分子量较大的蛋白质可以在凝胶顶部大孔径部分得到分离,同时分子量较小的蛋白质可以在凝胶底部小孔径部分得到分离。

另一个优点是梯度胶可以分辨分子量相差较小,在固定浓度胶中不能分辨的蛋白质。电泳过程中,蛋白质在梯度胶中迁移,经过的孔径越来越小,直到凝胶的孔径不能通透,这样电泳过程中蛋白质就被浓缩,集中在一个很窄的区带中。而分子量略小的蛋白质可以迁移得更靠一些,被集中在略面的区带中。由于梯度凝胶孔径逐步变小,在蛋白质不能通透的孔径附近对蛋白有浓缩作用,所以电泳后形成很窄的区带,可以分辨出分子量相差较小的蛋白质。

在蛋白分离范围相同的情况下,梯度胶的选择主要取决于目的蛋白的大小,虽然都可以分离10-250 kD的蛋白,但浓度为4-12%的梯度胶对55 kD以上的蛋白分离效果更好,而浓度为4-20%的梯度胶则更利于分离55 kD以下的蛋白。

凝胶分离范围


产品优势及常见问题解答

产品优势:

1.方便:即开即用,无需配制溶液和灌胶操作,并附送足量的电泳缓冲液,简化操作步骤,缩短实验时间,每天都有新结果;

2.快捷:电泳时间短,在150V电压下,电泳40-50分钟即可完成,再也不用熬夜做WB啦;

3.安全:无需接触有毒、刺激性试剂,和屏住呼吸加试剂say byebye;

4.兼容性强:兼容目市场各种电泳槽,无论是BIORAD,天能还是君意东方,通通百搭;

5.应用广泛:SDS变性及非变性电泳一胶搞定;

6.重复性好:通过全自动、大规模的凝胶灌注技术,品质稳定,保每片胶之间良好的重复性,重复实验补数据也不怕;

7.结果清晰:独特的凝胶缓冲配方使蛋白电泳条带更为清晰,锐利,均匀,分辨率更高;配套的MOPS Running Buffer为中性缓冲液,可以提高凝胶稳定性并避免蛋白在电泳过程中的再修饰。条带平整、清晰、锐利,无边缘效应,让你的WB结果张张精品。


常见问题解答:

1.指示剂偏斜

可能原因:电泳槽漏液

解决办法:调整胶板位置,检查密封条。

2.蛋白条带拖尾

可能原因:样品溶解不佳或者降解

解决办法:样品加热,离心取上清或重新制备新鲜样品。

3.指示剂呈倒三角状,即两边低、中间高,形成峰顶

可能原因:内、外槽电泳液量不够

解决办法:补满内槽电泳液,外槽电泳液补至2/3高度。

4.指示剂出现弧度

可能原因:底部出口被电泳槽上胶条部分覆盖或者胶板底部没卡紧

解决办法:调整胶板位置,避免底部出口和胶条重合。

5.上半部分蛋白条带无端消失

可能原因:内槽或样品被蛋白酶污染

解决办法:清洗实验相关试剂、仪器,避免被蛋白酶污染。

6.WB曝光图蛋白条带不完整

可能原因:湿转时海绵里面有气泡没有排干净或者夹子没夹紧

解决办法:将海绵里面的气泡排干净;调整夹子的位置。

7.样品条带在凝胶中扩散状

可能原因:样品含盐类过多

解决办法:采用透析或者超滤除盐。

原创作者:上海雅吉生物科技有限公司

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