操作方法:
(样品量范围:脑组织 1-80mg,脊髓组织 1-50mg)
(缓冲液需提预冷)
1. 称取 20-30mg 新鲜/冷冻组织放入 1.5ml 离心管中,加入 200ul 预冷的缓冲液 A。用提供的研磨杵按压反
复扭转匀浆组织 50-60 次。(研磨杵是可重复使用的,用 70%的酒精清洗即可。)
2. 再加入 500ul 预冷缓冲液 A 到离心管中继续研磨 20-30 次至匀浆状,冰上孵育 5min。孵育后将匀浆物转
入离心管柱接收管套管中(避免避开管底部较大的碎片),开盖在-20 度冰箱孵育 5-10min。
3. 盖上盖子,立刻 13,000Xg,离心 30s。弃去离心管柱,用移液器上下吹打 10-20 次将沉淀重悬(尽量避开粘附于管壁上的油脂)。如果离心后柱子上有液体残留,可以将起始样品量减半操作。
4. 600Xg,离心 5min。小心去除上清,加入 200ul 预冷的含有 5%BSA 的 PBS 重悬沉淀(这就是分离的细胞核,大多数情况下沉淀不是很明显)。这个细胞核悬液将用于下一步覆盖于 Buffer B 上。
5. 将 1ml 预冷的缓冲液 B 加到一个新的 1.5ml 离心管里(如有气泡请去除),将 200ul 第 4 步所得 PBS 细胞核重悬液用移液器小心贴着管壁缓慢吹出到缓冲液 B 的上方。1,000Xg,离心 10min。离心后,细胞碎片
油脂和磷脂会留在上层(乳状层)。下方的沉淀为纯化的细胞核。用 1ml 吸头小心地将乳状层吸出丢弃,
倒掉残留的缓冲液 B,用 50-200ul 含有 5%BSA 的 PBS 或者其他合适的缓冲液将细胞核沉淀重悬。确保
将管壁冲洗干净收集所有的细胞核。
培养的神经元细胞操作步骤:(缓冲液需冰上预冷)
1. 600Xg 低速离心 5min 收集 1x105-1x107 个细胞,用 1ml 预冷的 PBS 清洗细胞一次,将 PBS 去除干净。加入 200ul 缓冲液 A,用提供的研磨杵研磨 20-30 次。再加入 400ul 缓冲液 A 到管中,混匀后将细胞裂解物倒入离心管柱接收管套管中。在-20 度冰箱开盖孵育 5-10min。孵育后操作同上面第 3 步至第 5 步。
技术要点:
1. 虽然本试剂盒可以使用的样品量范围比较宽泛,但如果起始样品量不是限制因素,我们建议好使用 10-
30mg 组织或 2-5x106 个培养细胞以得到佳效果。起始样品越多得到的细胞核越多。
2. 终细胞核的纯度取决于样品类型。例如大脑灰质和一些培养的细胞,分离出的细胞核相对干净,甚至可不使用缓冲液 B 清洗。只需用 0.5ml 含有 5%的 BSA 的 PBS 清洗第 4 步得到的细胞核沉淀即可。但如果使用脊髓或白质,则推荐使用缓冲液 B 对核进行清洗。
3.通常大脑皮层样品可获得完整细胞核的产量一般约为 1x106/每 10mg 组织。如果起始组织或细胞非常少,缓冲液 B 的清洗可能导致细胞核进一步损失。
4.如果细胞核沉淀经过 Buffer B 清洗后明显减少,步骤 5 中离心速度可以增加到 1,000-1,500Xg,10min。这个离心力范围可以大限度的提高细胞核产量而不会受到髓鞘的污染。