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为什么双抗体夹心法那么常用的介绍？

点击次数：3686 发布时间：2018/3/8 10:27:16

双抗体夹心法，是将含有已知抗体的抗血清吸附在微量滴定板上的小孔里，洗涤一次；加待测抗原，如两者是特异的，则发生结合，然后把多余抗体洗除，加入与待测抗原呈特异反应的酶联抗体，使形成“夹心”；加入该酶的底物，若看到有色的酶解产物产生，说明在孔壁上存在相应的抗原。今天，就为您解释一下为什么双抗体夹心法会那么受欢迎。
1、将特异性抗体与固相载体联结，形成固相抗体。洗涤除去未结合的抗体及杂质。
2、加受检标本，保温反应。标本中的抗原与固相抗体结合，形成固相抗原抗体复合物。洗涤除去其他未结合物质。
3、加酶标抗体，保温反应。固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合。彻底洗涤未结合的酶标抗体。此时固相载体上带有的酶量与标本中受检抗原的量相关。

4、加底物显色。固相上的酶催化底物成为有色产物。通过比色，测知标本中抗原的量。在临床检验中，此法适用于检验各种蛋白质等大分子抗原，例如HBsAg、HBeAg、 AFP、hCG等。只要获得针对受检抗原的异性抗体，就可用于包被固相载体和制备酶结合物而建立此法。如抗体的来源为抗血清，包被和酶标用的抗体最好分别取自不同种属的动物。如应用单克隆抗体，一般选择两个针对抗原上不同决定簇的单抗，分别用于包被固相载体和制备酶结合物。这种双位点夹心法具有很高的特异性，而且可以将受检标本和酶标抗体一起保温反应，作一步检测。在一步法测定中，当标本中受检抗原的含量很高时，过量抗原分别和固相抗体及酶标抗体结合，而不再形成夹心复合物。类同于沉淀反应中抗原过剩的后带现象，此时反应后显色的吸光值(位于抗原过剩带上)与标准曲线(位于抗体过剩带上)某一抗原浓度的吸光值相同。

检查用 30mg 100020-200604 盐酸左旋咪唑杂质
鉴别用 100mg 100021-200503 泛影酸
含量测定 100mg 100022-200403 格隆溴铵
含量测定 100mg 甘罗溴铵
鉴别 50mg 100023-198601 谷氨酸
含量测定 100mg 100025-200904 磺胺甲噁唑　　
含量测定 100mg 100026-200903 磺胺嘧啶
含量测定 100mg 100028-199907 炔诺孕酮
含量测定 100mg 100030-200504 甲巯咪唑
含量测定 100mg 100031-200304 甲氧苄啶
50mg 100032- 己酸羟孕酮
含量测定 100mg 100033-200607 己烯雌酚

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