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丙酮酸脱氢酶(PDH)测试盒/分光光度法
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货号:XYP9076571
丙酮酸脱氢酶(PDH)测试盒说明书
注 意:正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
PDH(EC 1.2.4.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是丙酮酸脱氢酶复合体(PDHC)催化丙酮酸氧化脱羧的限速酶,催化丙酮酸脱梭生成羟乙基-TPP,把糖酵解和三羧酸循环连接起来。
测定原理:
PDH 催化丙酮酸脱氢,同时还原 2,6-二氯酚靛酚(2,6-DCPIP),从而导致 600nm 光吸收的减少。
需自备的仪器和用品可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
试剂一:50mL×1 瓶,-20℃保存;
试剂二:10mL×1 瓶,-20℃保存;
试剂三:1mL×1 支,-20℃保存;
试剂四:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;
试剂五:粉剂×1 支,4℃保存;
试剂六:粉剂×1 支,4℃保存;
试剂七:粉剂×1 支,4℃保存;
试剂八:粉剂×1 支,4℃保存;
工作液的配制:临用前把试剂五、试剂六、试剂七和试剂八转移到试剂四中混合溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1、 称取约 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1mL 试剂一和 10uL 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2、 将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3、 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4、 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 PDH(此步可选做)。
5、 在步骤④的沉淀中加入 200uL 试剂二和 2uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 PDH 活性测定。
测定步骤:
1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 605nm 处,蒸馏水调零。
2、工作液于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)中孵育 5min。
3、在 1mL 玻璃比色皿中加入 50µL 样本和 900µL 工作液,混匀,立即记录 605nm 处初始吸光值 A1 和 1min后的吸光值 A2,计算ΔA=A1-A2。
PDH 活性计算:
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(V 样×Cpr) ÷T=905×ΔA÷Cpr
(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=182.8×ΔA÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性(nmol/min /104 cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109 ]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.366×ΔA
V 反总:反应体系总体积,9.5×10-4 L;ε:2,6-二氯吲哚酚摩尔消光系数,2.1×104 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.05 mL;V 样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,1 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
热门标签:丙酮酸脱氢酶(PDH),丙酮酸脱氢酶(PDH)测试盒,分光光度法
















