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活细胞染色试剂盒（绿色荧光）
价格：￥ 500T/800元
品牌名称：$brandModel.Title型号： 原产地：中国大陆 更新时间：2026/10/15 11:06:33
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详细内容
活细胞染色试剂盒（绿色荧光）
产品货号：XY9-44146
产品规格及价格：500T/800元
产品简介：
活细胞染色试剂盒是采用C02绿色荧光探针染色活细胞的细胞质。
活细胞的特征是无处不在的细胞内酯酶活性，C02是一种可对活细胞进行荧光标记的细胞染色试剂，C02探针具有疏水性，因此能够轻易穿透活细胞膜。当其进入到细胞质后，活细胞的酯酶会将其水解为荧光C02，聚阴离子染料C02很好地保留在活细胞内，几乎无荧光的C02转变为绿色荧光的C02，在活细胞中发出均匀的强绿色荧光。
与其它同类试剂（如BCECF-AM和Carboxy-fluorescein diacetate）相比，C02是最适合作为荧光探针去染活细胞的，因为它的细胞毒性很低，而且不会抑制任何的细胞功能，如增殖和淋巴球的趋化性。
C02仅对活细胞染色。C02的最大激发和发射波长分别为490 nm和516 nm。
C02探针可以和PI、7AAD、EthD-I等死细胞染料结合用来作为活细胞和死细胞的双重染色。
本染色方法适用于荧光显微镜、荧光酶标仪等微孔板荧光扫描设备、流式细胞仪或者其它的荧光设备。
本染色方法适用于大多数真核细胞，包括贴壁细胞和悬浮细胞，单不包括细菌和酵母样本。
需要注意的是，C02有效染色的前提是相应的细胞模型的活力变化是酯酶活性变化等生化特性，不影响这些细胞特性的细胞毒性事件可能不能使用此方法进行准确评估。
产品应用：
荧光显微镜/激光共聚焦
使用方法：
1.螺旋盖微量试剂管装的试剂在开盖前请短暂离心，将盖内壁上的液体收集至管底，避免开盖时液体洒落。
2.染色液 A 为 DMSO 溶液，冬季气温较低时在室温时为凝固状态，极易粘附在管壁、吸头壁。注意需要加热溶解，吸头也需要放在培养箱预热，否者容易再次凝固在吸头内壁产生损耗。融解后离心至管底部再打开螺旋盖。
3.微量试剂 A 为了便于观察防止误操作导致损失，在试剂盒中时是采用透明管包装，收到后可以离心移入干燥黑色避光密封管或者用铝箔包裹避光。
4.细胞处理需要小心操作,尽量避免人为的损伤细胞。
5.由于 C02 的工作液稳定性比较差，染色工作液必须现配现用，并且在当天用完。
6.C02 对湿度非常敏感，若是 C02 溶液每次取完需要量后，必须紧紧密封盖子。建议根据单次用量，分装密封保存。不可使用含水的吸头。
7.试剂 A 母液请拧紧螺旋盖，避免受潮失效。
8.以下以培养细胞收集后染色为例。原位染色以染色液充分覆盖细胞样本即可。
9.有效染色的前提是相应的细胞模型的活力变化是酯酶活性变化，不影响酯酶活性变化的细胞毒性事件可能不能使用此方法进行准确评估
染色工作液的配制：
根据样品数按下列比例配制染色工作液。
用染料稀释液试剂 B 将染色液 A 进行 10 倍稀释。
每 10ml HBSS 缓冲液或无血清培养基中加入 100µl 稀释过的染色液 A，充分混匀，即成染色工作液 A。
荧光显微镜观察：
1. 准备样本细胞。
2. 用 PBS 洗涤细胞 2-3 次。
3. 用 100-150µl 染色工作液 A 至盖玻片/96 孔板将细胞样品覆盖（或重悬）。
4. 在室温或 37℃避光孵育 20-45 分钟。
5. 用 PBS 洗涤细胞。
6. 用激光共聚焦/荧光显微镜检测结果。最大激发为 490 nm，最大发射波长为 515 nm。
显微镜结果分析 ：
荧光显微镜下，使用 488nm 波长激发，活细胞为黄绿色。
流式细胞仪检测：
1. 收集细胞。
2. 用 PBS 洗涤细胞两次。
3. 制备 1 mL 细胞悬浮液，浓度为 0.1 至 5×106 细胞/ mL。 细胞可以在无血清培养基或其它缓冲液中重。
4. 在细胞中加入适量 C02 溶液和适量 PI 母液，混匀。
5. 在室温或 37℃避光孵育 15-30 分钟。
6. 尽快用流式细胞仪检测结果。
荧光酶标仪检测：
1. 在微孔板中准备细胞样本孔以及对照孔。
2. 用 PBS 洗涤细胞 2-3 次。
3. 加入 200µl 染色工作液。
4. 在室温或 37℃避光孵育 15-45 分钟。
5. 用 PBS 洗涤细胞。
6. 加入适量 PBS。
7. 用荧光酶标仪/荧光光度计检测结果。最大激发为 490 nm，最大发射波长为 525 nm。
酶标仪结果分析 ：
可以根据不同荧光强度来计算样品中活细胞和死细胞相对数量（以百分比表示），或者活细胞/死细胞的绝对数量。以下以 PI 染色为例，实际检测参数以所使用的死细胞探针为准。
% Live Cells =（F(530)sam – F(530)min）÷ （F(530)max – F(530)min）× 100%
% Dead Cells =（F(620)sam – F(620)min）÷（F(620)max – F(620)min）× 100%
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