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MaxEndoFree无内毒素质粒小提试剂盒
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详细内容
MaxEndoFree 无 内 毒 素 质 粒 小 提 试 剂 盒
E n d o F r e e M i n i P l a s m i d P u r i f i c a t i o n K i t
( 离心柱型 )
产品及特点:
本试剂盒适用于无内毒素质粒 DNA 的小量制备。菌体经碱裂解、高盐、低 pH 处理,
质粒可从菌体中释放出来,并特异、高效地被离心柱硅胶膜吸附。再经内毒素清除液清洗,
可将绝大多数菌体内毒素清除干净,然后通过清洗液的清洗可去除蛋白及其他杂质,
在低盐、高 pH 条件下洗脱得到高纯度无内毒素的质粒 DNA。使用本试剂盒可从 1 - 5 ml
过夜培养的菌液中纯化得到高达 20 µg 的无内毒素质粒 DNA,所得质粒除可用于常规分
子生物学实验外,还适合细胞株的转染实验。它具有下列特点:
1. 快捷、高效:操作简便,得率高,节约时间;
2. 纯度高:沉淀致密,去杂干净;
3. 内毒素去除简单:柱上去除内毒素,方便快速,清除干净。
产品货号:XY910107
产品规格:50T/350元、100T/590元、200T/1010元
成分规格:
(注意:使用前将全部 RNase A 溶液加到 Buffer S1 中混合均匀,2 - 8℃保存;按要求在 Buffer
W2 中加入无水乙醇)
保存条件
在室温(15-25℃)干燥条件下,可保存 12 个月;更长时间的保存可置于 2-8℃。若溶
液产生沉淀,应在使用前置于 37℃下溶解沉淀。加入 RNase A 后的 Buffer S1 应置于 2-
8℃保存,可稳定保存 6 个月。
使用方法
柱平衡:向吸附柱中(吸附柱放入收集管中)加入 400 µl 的平衡液 BL,12,000 rpm (-13,400×g ) 离
心 1 min,弃收集管中滤液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)
1. 取 1 - 5 ml 过夜培养的菌液,室温 12,000 rpm 离心 1 min,尽量将上清去除干净。
(注意:根据菌液的浓度决定取液量,浓度高时取 1.5 ml 菌液离心即可,浓度低时可多收集一次)
2. 加入 250 µl Buffer S1,旋涡震荡或用移液器充分吹打使菌体重悬均匀。
(注意:菌体沉淀一定要悬浮均匀,如有未悬浮的菌块会影响裂解,导致提取的质粒浓度及纯
度降低)
3. 加入 250 µl Buffer S2,温和颠倒混匀使菌体完全裂解,直到溶液变成清亮、粘稠。
(注意:不可剧烈震荡,以免造成基因组 DNA 片段的污染,所用时间不要超过 5 min,以免质粒受
到破坏)
4. 加入 250 µl Buffer S4,立即颠倒混匀 6-8 次,12,000 rpm 离心 10 min,小心将上清液
转移到一干净的离心管中,加入 250 µl 异丙醇混匀。
(注意:Buffer S4 加入后应立即混合,避免产生局部沉淀)
5. 将混合液转入离心吸附柱中,12,000 rpm 离心 30 sec,弃收集管中滤液。
(注意:吸附柱的最大容量为 750 µl,分两次转入)
6. 向吸附柱中加入 250 µl ToxinOut Buffer,室温静置 5 min,12,000 rpm 离心 1 min,弃
收集管中滤液。
7. 加入 600 µl Buffer W2,室温 12,000 rpm 离心 30 sec,弃收集管中滤液。
(注意:Buffer W2 为浓缩液,按要求加入无水乙醇,用后应立即盖紧瓶盖,以防酒精挥发)
8. 加入 500 µl Buffer W2,室温 12,000 rpm 离心 30 sec,弃收集管中滤液。
9. 干燥。将离心吸附柱于 12,000 rpm 离心 2 min,甩干残留漂洗液。
(注意:此步不能省略,否则残留乙醇会影响质粒的后续使用)
10. 将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 塑料离心管(自备)中,加入 50 - 100 µl 的洗脱
液 Buffer EB,室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 1 min,离心管底溶液即质粒 DNA。
(注意:为增加洗脱效率,可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱,可用 NaOH 调整其
pH 值在 7.0 - 8.5 之间,为了增加质粒回收率,可将得到的溶液重新加入到离心管中,室温放置 2
min,再次离心收集)
低拷贝或大质粒(>10 kb)提取
如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10 kb 的大质粒,应加大菌体使用量,使用 5 - 10
ml 过夜培养物,同时按照比例增加 Buffer S1、S2、S3 的用量,洗脱液 Buffer EB 应在
60℃水浴预热,在吸附和洗脱时可以适当延长时间,以增加提取效率。其它步骤相同。
注意事项
●细菌培养时间一般为 12-16 小时,如接种量大则应减少培养时间,过度培养会降低质粒质量甚至导致质粒 DNA 突变;
●每次使用时都要注意 Buffer S2 和 S4 是否形成沉淀,如有沉淀 37℃溶解后再用;
●注意溶液 S1,S2 和 S4 的用量比例,若细菌量增大,需按比例放大这些溶液的使用 量;
●质粒的产量跟细菌量、质粒拷贝数、质粒大小和操作规范程度密切相关。
仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于人或动物的治疗等任何其他用途,不为任何个人提供产品和服务。以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。
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