
ELISA检测时,如何排除其他抗体干扰?
ELISA 里最常见的干扰抗体主要包括异嗜性抗体、人抗动物抗体(HAAA)、类风湿因子 RF、自身抗体、样本中残留的治疗性抗体,它们可以桥接捕获抗体与检测抗体,不依赖靶抗原就产生假阳性;也可以结合抗原,阻断抗原与包被 / 检测抗体结合,造成假阴性。下面按样本前处理、体系添加阻断试剂、抗体试剂层面优化、实验对照设计四个维度说明。
一、样本前处理手段
样本稀释适度稀释样本可以降低干扰抗体浓度。干扰抗体亲和力通常低于特异性抗体,稀释后干扰效应衰减更明显;但稀释同时靶抗原浓度也下降,不能无限稀释,需要做稀释线性验证。仅适合干扰程度较轻的样本,强干扰样本效果有限。
热处理56℃水浴 30 min 灭活部分不稳定的异嗜性抗体、类风湿因子。注意:高温会破坏待测抗原,仅适合抗原耐热的体系;蛋白类细胞因子很多不耐热,不能用。
沉淀 / 吸附去除使用聚合兔 IgG、小鼠 IgG 固相吸附剂,或 Protein A/G 磁珠,从样本中预先清除内源性 IgG。适合高滴度干扰样本;缺点是可能共沉淀待测抗原,需要验证抗原回收率。
二、反应体系添加阻断试剂(最常用)
异嗜性抗体阻断剂(HBR)商品化 HBR 多为混合动物 IgG,加入样本稀释液中。原理:游离动物 IgG 预先结合样本中的异嗜性抗体,阻止其桥接捕获和检测抗体。适合人血清、血浆样本,夹心 ELISA 。
注意:要匹配捕获 / 检测抗体的宿主种属,比如一抗是小鼠来源,就加入小鼠 IgG。
正常动物血清在样本稀释液中加入与一抗同宿主的正常血清(5%~10%),血清里大量无关 IgG 竞争性结合样本中的 HAAA / 异嗜性抗体,降低桥接。这也是很多自建 ELISA 常规方案;缺点是血清批次差异大,部分血清自带杂抗体,反而抬升背景。
非特异性 IgG单独加入无关宿主 IgG(如小鼠 IgG),相比全血清成分更简单,背景波动更小。
三、试剂与实验体系优化(从源头减少被干扰的机会)
抗体宿主搭配策略捕获抗体和检测抗体尽量选用不同宿主来源,减少异嗜性抗体同时识别两个抗体的概率。比如捕获用兔源,检测用羊源;若捕获和检测都是小鼠单抗,异嗜性抗体极易桥接,假阳性风险显著升高。
选用 F (ab’)₂片段代替完整 IgG异嗜性抗体大多识别抗体 Fc 段。使用去掉 Fc 段的 F (ab’)₂作为捕获 / 检测抗体,消除 Fc 介导的桥接,可大幅降低 HAAA、异嗜性抗体干扰;成本更高,抗体活性需要重新验证。
优化抗体浓度不要使用过高浓度捕获 / 检测抗体。过量抗体容易被干扰抗体结合;在保证特异信号前提下,滴定到最低有效工作浓度。
基质稀释液的设计样本稀释液除蛋白(BSA)、Tween20 之外,预先加入阻断 IgG,不要只用单纯 PBS 稀释样本。
四、设置对照,识别干扰(区分真阳性 vs 抗体干扰)
仅做阻断还不够,必须设置对照来判断是否存在抗体干扰:

空白对照、阴性基质对照:评估本底。
样本稀释线性试验:真实抗原随稀释,OD 按比例下降;抗体干扰的假阳性,稀释后 OD 下降不成线性,甚至下降很慢。
加标回收实验:向样本中加入已知量靶抗原,看回收率。若干扰抗体阻断抗原结合,回收率偏低;若存在桥接假阳性,基线异常抬高。
抗体阻断验证孔:同一份样本分两份,一份加 HBR,一份不加;加阻断剂后 OD 明显下降,提示存在异嗜性抗体干扰。
抗原中和实验:样本预先用过量重组抗原孵育。真阳性信号会被抗原中和降低;异嗜性抗体造成的假阳性,信号基本不变。
五、特殊干扰抗体的针对性处理
类风湿因子 RF:RF 可以结合 IgG Fc 段,常造成假阳性。F (ab’)₂片段、HBR、56℃灭活都可以减弱 RF 干扰。
治疗性单抗:临床样本中注射的药物抗体,会直接结合包被抗原或检测抗体。这种情况 HBR 效果有限,需要选择识别抗原不同表位的配对抗体,或选用不识别药物抗体的试剂。
自身抗体:部分自身抗体直接结合靶抗原,造成假阴性,此时阻断 IgG 效果有限,只能更换识别表位的抗体对。
六、局限性
阻断试剂不能 100% 消除所有干扰,只能降低概率。部分高滴度、高亲和力异嗜性抗体,即使加 HBR,仍有残留干扰。所以不能只依赖阻断,必须搭配对照实验来验证结果可靠性。
方案精简段落(可直接粘贴)
样本中异嗜性抗体、人抗动物抗体、类风湿因子等内源性抗体可通过桥接捕获 / 检测抗体产生假阳性,或结合靶抗原造成假阴性。可通过样本稀释、合适条件热处理、固相 IgG 吸附预处理样本;在样本稀释液添加异嗜性抗体阻断剂或同源正常动物 IgG 进行竞争性阻断;优先选择不同宿主来源的配对抗体,或采用 F (ab’)₂片段抗体去除 Fc 段结合位点。同时设置稀释线性、加标回收、阻断对照、抗原中和对照,区分真实信号与抗体干扰。阻断方法存在局限性,需结合多重对照共同评估结果可靠性。
来源:上海笃玛生物科技有限公司
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