一、常见成因
不同类型沉淀的形成原因差异明显,核心可分为三类:
最常见:纤维蛋白原析出
这占肉眼可见沉淀的60%以上,属于血清正常物理现象。血清生产、储存全程处于低温,纤维蛋白原本保持溶解状态;解冻后温度回升,纤维蛋白原会转化为纤维蛋白析出,形成肉眼可见的絮状沉淀,反复冻融、温度波动会显著增加沉淀量。
易误判:磷酸钙沉淀
这种沉淀为细小颗粒,会让血清整体呈现云雾状浑浊,在37℃培养环境中溶解度降低,沉淀量会增加。显微镜下观察是悬浮的小黑点,受布朗运动影响四处游动,非常容易被误判为微生物污染。
其他成分聚集
血清中的脂蛋白、胆固醇、多种蛋白,在温度骤变(直接从-20℃放入37℃解冻)、长时间高温放置、不当热灭活操作时,会发生变性聚集,形成白色颗粒、絮状或油脂状沉淀;微生物污染也会引发沉淀,但这种情况伴随血清整体浑浊、异味,属于异常情况。
二、标准化处理方法
只要血清无异味、无整体颜色异常浑浊,单纯沉淀无需丢弃,可按以下步骤处理:
沉淀量 | 处理方案 | 注意事项 |
少量沉淀 | 直接使用,或静置片刻待沉淀沉底,取上清使用即可 | 不影响细胞活性,无需额外操作 |
较多沉淀 | 1. 无菌条件下分装至离心管,400g(约2000rpm)离心1-5分钟,取上层澄清血清使用; 2. 或静置至沉淀沉底,无菌转移上清到新容器 | 不推荐直接过滤:沉淀极易堵塞滤膜,还会截留血清中的大分子营养成分;确需过滤要先离心去除大沉淀 |
如果怀疑存在微生物污染,可以取少量血清涂布LB琼脂平板,37℃培养24小时观察,无菌落生长即可排除污染。
三、预防沉淀的操作要点
通过规范操作可以大幅减少沉淀产生:
分装冻存避免反复冻融:收到血清后按单次实验用量分装,长期储存于-20℃以下环境,每次取用1支,从根源避免反复冻融。
梯度解冻避免温差过大:遵循三步解冻法:-20℃血清先转移到4℃冰箱过夜融化,再转到室温轻摇混匀,禁止直接从-20℃放入37℃水浴解冻,大幅降低蛋白析出概率。
谨慎热灭活:常规实验不需要对血清热灭活,热灭活会显著增加沉淀量;确需灭活时,严格控制56℃水浴30分钟,全程每隔5分钟轻摇均匀,避免局部高温。
解冻后尽快使用:解冻后的血清不要在4℃长期存放,建议1周内用完,避免成分改变析出沉淀。