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谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性检测试剂盒 (可见分光光度法)

点击次数:84 发布时间:2025/1/13 11:12:41
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谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性检测试剂盒

(可见分光光度法)

产品货号:BA1115

产品规格:50管/24样

产品简介:

谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase, GSH-Px/GPX)是机体内广泛存在的一种重要的过氧化物分解酶。GPX能够催化还原型谷胱甘肽(GSH)生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),使有毒的过氧化氢还原成无毒的羟基化合物。

GPX催化H2O2氧化GSH,产生GSSG,GSH能与DTNB生成在412nm处有特征吸收峰的化合物,412nm下吸光度的下降即可反应GPX的活性。

注意:实验之建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者 增加样本量进行检测。

产品内容:

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体40mL×1瓶

2-8℃

试剂一

粉剂×1瓶

2-8℃

试剂二

粉剂×1瓶

2-8℃

试剂三

液体20 μL×1支

2-8℃

试剂四

液体60mL×1瓶

2-8℃

试剂五

液体15mL×1瓶

2-8℃

试剂六

液体15mL×1瓶

2-8℃

标准品

粉剂×1支

2-8℃

溶液的配制:

1. 试剂一:临用加入5.5mL蒸馏水溶解;

2. 试剂二:临用加入6.6mL蒸馏水充分溶解待用;

3. 试剂三:液体置于试剂瓶内EP管中。临用按1μL试剂三:1mL蒸馏水的比例稀释试剂三,现用现配;

4. 试剂四:瓶底若有结晶可50℃水浴溶解,此溶液为饱和溶液,若底部终还有结晶,吸取上清使用即可;

5. 标准品:10mg还原型谷胱甘肽。临用加入1.62mL蒸馏水溶解为20μmol/mL的标准溶液备用。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、天平、台式离心机、1mL玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、EP管。

操作步骤:

一、粗酶液的提取:

1. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建议称取0.05g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆。10000rpm,4℃离心10min,取上清置冰上待测(如上清不清澈,再离心3min)。

2. 细菌、真菌:按照细胞数量104个:提取液体积(mL)500~1000:1的比例,建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(率300w,超声3 s,间隔7s,总时间3min)然后10000rpm,4℃,离心10min,取上清置冰上待测(如上清不清澈,再离心3min)。

3. 血清(浆)等液体:直接测定。

二、测定步骤:

1. 分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。

2. 将20μmol/mL标准液用提取液稀释为0.2μmol/mL的标准溶液。再吸取100μL标准溶液与400μL试剂四混匀待用,此标准液混合物的浓度为0.04μmol/mL。标准液混合物现用现配。

3. 样本混合物:将150μL样本与150μL试剂一混合后室温放置5min。

4. 操作表:(在1.5mL离心管中依次加入下列试剂)

测定管

对照管

样品混合物(μL)

100

-

试剂二(μL)

100

100

37℃下预热5min

试剂三(μL)

100

100

37℃下反应5min

试剂四(mL)

1

1

样品混合物(μL)

-

100

4000rpm常温离心5min,取上清。

试剂名称(μL)

测定管

对照管

标准管

空白管

蒸馏水

100

100

100

100

提取液

-

-

-

100

上清液

500

500

-

-

标准液混合物

-

-

500

-

试剂四

-

-

-

400

试剂五

200

200

200

200

试剂六

200

200

200

200

混匀后尽快测定412nm下的吸光度,分别记为A测定管、A对照管、A标准管、A空白管。计算△A测定=A对照管-A测定管,△A标准=A标准管-A空白管。

三:GPX活性计算:

1. 抑制百分率的计算

抑制百分率=(A对照管-A测定管) ÷(A对照管-A空白管)× 100%

尽量使样品的抑制百分率在30-70%范围内,越靠近50%越准确。如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%,则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高,则需适当稀释样品;如果测定出来的抑制百分率偏低,则需重新准备浓度比较高的待测样品。

2. GPX活性计算

(1)按蛋白浓度计算

活力单位定义:每mg蛋白在反应体系中每分钟催化1nmol GSH氧化定义为一个酶活力单位。

GPX (U/mg prot) =ΔA测定÷(△A标准÷C标)×1000×V酶促÷(Cpr×V样)÷T

=208×ΔA测定÷△A标准÷Cpr。

(2)按样本鲜重计算

活力单位定义:每g样品在反应体系中每分钟催化1nmol GSH氧化定义为一个酶活力单位。

GPX (U/g 鲜重)= ΔA测定÷(△A标准÷C标)×1000×V酶促÷(V样÷V样总×W)÷T

=208×ΔA测定÷△A标准÷W。

(3)按细胞数量计算

活力单位定义:每104个细胞在反应体系中每分钟催化1nmol GSH氧化定义为一个酶活力单位。

GPX (U/104 cell)= ΔA测定÷(△A标准÷C标)×1000×V酶促÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T

=208×ΔA测定÷△A标准÷细胞数量。

(4)按液体体积计算

活力单位定义:每毫升液体在反应体系中每分钟催化1nmol GSH氧化定义为一个酶活力单位。

GPX (U/mL)= ΔA测定÷(△A标准÷C标)×1000×V酶促÷V样÷T=260×ΔA测定÷△A标准。

C标:标准液混合物的浓度:0.04μmol/mL;V酶促:酶促反应体系体积,1.3mL;V样:样本混合物中含有的样本体积,0.05mL;V样总:提取液体积,1mL;Cpr:上清液蛋白浓度(mg/mL);T:反应时间,5min;细胞数量:以万计;W:样品质量,g;1000:换算系数,1μmol=1000nmol。

注意事项:

1. 吸光度若大于1.2时,建议将样本用提取液稀释后进行测定。

2. 建议一次不要做过多样本以免检测时间过长影响显色,使测定不准确。

原创作者:上海尚宝生物科技有限公司

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