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鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）酶联免疫分析说明书
点击次数：372 发布时间：2015/5/18 16:21:47
商家名片
陈**
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试剂盒使用说明书
本试剂盒仅供研究使用。
鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）酶联免疫分析检测范围：
10ng/L-360ng/L
使用目的：
本试剂盒用于测定鱼血清、血浆及相关液体样本中肿瘤坏死因子α（TNF-α）含量。
实验原理
本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中鱼肿瘤坏死因子α（ TNF-α）
鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次
加入肿瘤坏死因子α（TNF-α），再与 HRP 标记的肿瘤坏死因子α（TNF-α）抗体
。
形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物 TMB 显色。TMB 在 HRP 酶的催
化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的肿瘤坏死因子
α（TNF-α）呈正相关。用酶标仪在 450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计
算样品中鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）浓度。
标本要
1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能
马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融
2．不能检测含NaN3的样品，因 NaN3抑制辣根过
（HRP）活性。
注意事项鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）酶联免疫分析
1．试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未
用完，板条应装入密封袋中保存。
2．浓洗涤液可能会有
析出，稀释时可在浴中加温助溶，洗涤时不影响
。
3．各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间最好
控制在 5分钟内，如标本数量多，推荐使用排枪加样。
4．请每次测定的同时做标准曲线，最好做复孔。如标本中待测物质含量过高（样本 OD值
大于标准品孔第一孔的 OD值），请先用样品稀释液稀释一定倍数（n倍）后再测定，计
算时请最后乘以总稀释倍数（×n×5）。
5．封板膜只限一次性使用，以避免交叉
6．底物请避光保存。
7．严格按照说明书的操作进行，试验
8．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。
9．本试剂不同批号组分不得混用。
本试剂盒仅供研究使用。
鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）酶联免疫分析检测范围：
10ng/L-360ng/L
使用目的：
本试剂盒用于测定鱼血清、血浆及相关液体样本中肿瘤坏死因子α（TNF-α）含量。
实验原理
本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中鱼肿瘤坏死因子α（ TNF-α）
鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次
加入肿瘤坏死因子α（TNF-α），再与 HRP 标记的肿瘤坏死因子α（TNF-α）抗体
。
形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物 TMB 显色。TMB 在 HRP 酶的催
化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的肿瘤坏死因子
α（TNF-α）呈正相关。用酶标仪在 450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计
算样品中鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）浓度。
标本要
1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能
马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融
2．不能检测含NaN3的样品，因 NaN3抑制辣根过
（HRP）活性。
注意事项鱼肿瘤坏死因子α（TNF-α）酶联免疫分析
1．试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未
用完，板条应装入密封袋中保存。
2．浓洗涤液可能会有
析出，稀释时可在浴中加温助溶，洗涤时不影响
。
3．各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间最好
控制在 5分钟内，如标本数量多，推荐使用排枪加样。
4．请每次测定的同时做标准曲线，最好做复孔。如标本中待测物质含量过高（样本 OD值
大于标准品孔第一孔的 OD值），请先用样品稀释液稀释一定倍数（n倍）后再测定，计
算时请最后乘以总稀释倍数（×n×5）。
5．封板膜只限一次性使用，以避免交叉
6．底物请避光保存。
7．严格按照说明书的操作进行，试验
8．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。
9．本试剂不同批号组分不得混用。
原创作者：北京杰辉博高生物科技有限公司
