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Western Blot样品处理方法

点击次数:316 发布时间:2016/12/12 9:37:17
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Western Blot样品处理方法

1.培养的细胞(定性):

⑴ 去培养液后用温的PBS冲洗2~3遍(冷的PBS有可能使细胞脱落)。

⑵ 对于6孔板来说每孔加200~300μl,60~80℃的1×loading buffer。

⑶ 100℃,1min。

⑷ 用细胞刮刮下细胞后在EP管中煮沸10min,期间vortex 2~3次。

⑸ 用干净的针尖挑丝,如有团块则将团块弃掉,如果没有团块但有拉丝现象,则可以将EP管置于0℃后在14000~16000g离心2min,再次挑丝。若无团块也无丝状物但溶液有些粘稠,可通过使用1ml注射器反复抽吸来降低溶液粘滞度,便于上样。

⑹ 待样品恢复到室温后上样。

2.培养的细胞(定量):

⑴ 去培养液后用温的PBS冲洗2~3遍(冷的PBS有可能使细胞脱落)。

⑵ 加入适量的冰预冷的裂解液后置于冰上10~20min。

⑶ 用细胞刮刮下细胞,收集在EP管后超声(100~200w)3s,2次。

⑷ 12000g离心,4℃,2min。

⑸ 取少量上清进行定量。

⑹ 将所有蛋白样品调至等浓度,充分混合沉淀后加loading buffer后直接上样最好,剩余溶液(溶于1×loading buffer)可以低温储存,-70℃一个月,-20℃一周,4℃ 1~2天,每次上样前98℃,3min。

3.组织:

⑴ 匀浆 对于心肝脾肾等组织可每50~100mg加1ml裂解液,肺100~200mg加1ml裂解液。可手动或电动匀浆。注意尽量保持低温,快速匀浆。

⑵ 12000g离心,4℃,2min。

⑶ 取少量上清进行定量。

⑷ 将所有蛋白样品调至等浓度,充分混合沉淀加loading buffer后直接上样最好,剩余溶液(溶于1×loading buffer)可以低温储存,-70℃一个月,-20℃一周,4℃ 1~2天,每次上样前98℃,3min。

(裂解液配方:Tris-Cl (pH7.4) 20mM,EDTA 1mM

由于蛋白酶抑制剂可影响蛋白定量,且新鲜蛋白很少降解,故可不加,如加按建议比例即可。提取磷酸化的蛋白还需加Na3VO4 0.1mM及NaF 25mM)。

1×loading buffer配方:10% 甘油,50mM Tris·Cl (pH6.8),2% β-巯基乙醇,0.2~0.5‰溴酚蓝,2%或5%的SDS。Buffer可配成2×~5×,注意SDS终浓度勿超过10%。

对于心脏,肌肉等碎屑较多的组织可用5%的SDS,肝肾等组织2%即可。)

原创作者:杰辉生物(北京)科技发展有限公司

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