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CAR表达怎么测?定点荧光标记蛋白让流式细胞检测更直接

点击次数:44 发布时间:2026/9/24 14:18:07
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CAR‑T、CAR‑NK等工程化免疫细胞完成靶基因导入后,需要面临一个简单却十分关键的问题:CAR是否成功在细胞表面表达?CAR只有经过正确表达、折叠并定位至细胞膜,才能通过胞外抗原识别结构域与靶抗原结合。流式细胞术常用于检测CAR细胞阳性率和表达情况。

体内(in vivo)CAR‑T技术是近来细胞免疫研究的热点,直接在患者体内原位编程T细胞,省去体外加工步骤。CAR‑T细胞的动态分布、扩增效率、功能持久性、药代动力学等有效检测,直接关系剂量优化、安全性评估及疗效预测。深入理解并优化这种“活细胞药物”在体内的行为是当前研究的重点。

定点标记蛋白作为重要的监测与分析工具,在CAR阳性检测中具有重要应用。义翘神州定点标记重组蛋白产品,显著提升检测的灵敏度、特异性与准确性,有助于加速CAR‑T的临床转化与产业化进程。

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01 用于CAR检测的流式细胞术

流式细胞术(FCM)已广泛用于血液中淋巴细胞亚群的检测,比如使用荧光标记试剂测定分析细胞特性。FCM贯穿CAR‑T产品的研发、生产全过程。FCM与其他技术组合,用于检测CAR‑T细胞的转导效率、阳性率、表型等关键质量属性。CAR‑T的功能表征包括细胞增殖、脱颗粒、细胞因子释放等。在完成输注后,还可用FCM监测外周血或骨髓样本中CAR‑T细胞的数量和表型,评估药代动力学,表征细胞分化、活化、耗竭或衰老相关的生物标志物。

流式细胞术检测的关键是试剂。有多种CAR‑T检测试剂供选择,比如非特异性试剂Protein L、人源IgG铰链区抗体,靶点特异性试剂工程化重组抗原、荧光标记抗原,CAR构建特异性试剂scFv抗独特型抗体、连接肽(G4S linker)抗体等。

Cytometry Part B Clinical - 2026 - Ling - Flow cytometry‐based monitoring of chimeric antigen receptor  CAR  T cells -2.jpg

(源自文献:Doi: 10.1002/cyto.b.70026)

02 荧光标记蛋白:让流式细胞检测更直接

在众多CAR检测试剂中,荧光标记的靶抗原蛋白直接利用CAR与抗原之间的特异性结合进行检测。以靶向BCMA的CAR‑T细胞为例,将荧光标记的BCMA重组蛋白与细胞孵育,正确表达于细胞表面的CAR能识别抗原构象,通过胞外结构域与荧光标记蛋白结合。通过流式细胞术检测荧光信号,就可以分析CAR‑T细胞阳性率和相对表达水平。

从检测原理上,重组蛋白与Protein L、IgG铰链区抗体或linker抗体不同,其直接识别CAR的抗原结合位点,用于检测已经定位于细胞表面、保持靶抗原结合能力的CAR。如果使用未标记的重组蛋白,还需要通过标签抗体或其他二级检测试剂产生荧光信号,可能会带来非特异性结合与背景信号。荧光标记蛋白可用于CAR细胞转导效率、表达情况分析,还可以结合细胞表型、活化状态等其他流式指标进行多参数检测。

Demaret等人建立了一种基于荧光标记CD19蛋白的流式检测方法,用于监测CD19 CAR‑T细胞。研究以Yescarta输注产品及28例患者的外周血为样本,直接识别CAR阳性T细胞,并同步分析CD4+、CD8+亚群及其动态变化。研究比较了FITC‑CD19、PE‑CD19和生物素化‑CD19检测试剂,三种方法测得的CAR‑T比例总体一致,其中生物素化‑CD19对阳性与阴性细胞的区分更清晰,而直接荧光标记CD19流程更简便,更适合常规检测。

03 为什么定点荧光标记蛋白更有优势?

重组蛋白进行荧光标记后需要保持正确的构象和结合活性,因此,荧光基团偶联在哪里、标记过程是否影响蛋白质结构,都会对检测结果产生影响。随机化学标记通常利用蛋白表面的赖氨酸、半胱氨酸等反应基团偶联荧光染料,而这些基团会分布在不同位置,会存在批间一致性差、标记效率不稳定、易聚集等问题,造成CAR检测结果不准确。

定点标记将荧光基团引入预设位置,使标记位置和标记程度可控,避免对关键抗原表位和蛋白整体构象产生干扰,更好的保留重组蛋白的原有结合活性,显著提升检测的灵敏度、特异性和准确性。

04 定点标记蛋白,让CAR流式检测更简单

从CAR转导效率评价到细胞产品表征,再到输注后CAR‑T细胞扩增和持续性监测,流式细胞检测直接读取CAR抗原结合能力。将重组抗原的构象质量与可控的定点荧光标记结合,进一步减少检测试剂本身带来的变量,为CAR细胞的稳定、可重复分析提供基础。

基于CAR‑T、CAR‑NK等工程化免疫细胞的检测需求,义翘神州建立定点标记平台,在目标蛋白的特定位置进行荧光偶联,目前可提供PE、APC、AF 488、AF 647等多种荧光形式,覆盖CD19、BCMA、HER2、EGFR、B7‑H3、FOLR1、SLAMF7等多个细胞治疗相关靶点。

【参考文献】

1. Jianhua Ling, Wei Wang and Sa A. Wang. Flow cytometry‑based monitoring of chimeric antigen receptor (CAR) T cells: Reagent selection, assay design, and clinical utility. Cytometry. 2026. DOI: 10.1002/cyto.b.70026

2. Fröse et al., Development of an antigen‑based approach to noninvasively image CAR T cells in real time and as a predictive tool. Sci. Adv. 2024.

3. Schanda, et al. Sensitivity and Specificity of CD19.CAR‑T Cell Detection by Flow Cytometry and PCR. Cells 2021, https://doi.org/10.3390/cells10113208

原创作者:北京义翘神州科技股份有限公司

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